| 英文缩略词表 | 第3-5页 |
| 中文摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 前言 | 第15-26页 |
| 1.1 研究背景 | 第15-24页 |
| 1.1.1 高原低氧对机体的影响 | 第15-16页 |
| 1.1.2 高原低氧对药物的药代动力学的影响 | 第16-18页 |
| 1.1.3 Ⅰ相代谢酶和Ⅱ相代谢酶简介及其在药物代谢中的作用 | 第18-20页 |
| 1.1.4 高原低氧对CYP450影响的研究 | 第20-23页 |
| 1.1.5 低氧对CYP450影响的调节机制研究现状 | 第23-24页 |
| 1.2 研究内容 | 第24-25页 |
| 1.3 技术路线 | 第25-26页 |
| 第二章 急慢性低氧对大鼠血气、生化及肝脏病理的影响 | 第26-32页 |
| 引言 | 第26-27页 |
| 2.1 材料 | 第27-28页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第27页 |
| 2.1.2 试剂及仪器 | 第27-28页 |
| 2.2 方法 | 第28-29页 |
| 2.2.1 实验分组 | 第28页 |
| 2.2.2 低氧处理过程 | 第28页 |
| 2.2.3 样品采集及处理 | 第28页 |
| 2.2.4 统计学处理 | 第28-29页 |
| 2.3 实验结果 | 第29-31页 |
| 2.3.1 大鼠肝脏组织HE染色的结果 | 第29页 |
| 2.3.2 血气结果 | 第29-30页 |
| 2.3.3 生化结果 | 第30-31页 |
| 2.4 讨论 | 第31页 |
| 小结 | 第31-32页 |
| 第三章 急慢性低氧对大鼠Ⅰ相代谢酶CYP450活性和蛋白表达的影响 | 第32-43页 |
| 引言 | 第32-33页 |
| 3.1 急慢性低氧对大鼠CYP450活性的影响 | 第33-38页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第33页 |
| 3.1.2 试剂及仪器 | 第33-34页 |
| 3.1.3 溶液制备 | 第34页 |
| 3.1.4 动物分组 | 第34页 |
| 3.1.5 低温差速离心法提取肝微粒体 | 第34-35页 |
| 3.1.6 孵育体系的组成 | 第35页 |
| 3.1.7 色谱条件 | 第35-36页 |
| 3.1.8 方法学验证 | 第36-38页 |
| 3.1.9 实验结果 | 第38页 |
| 3.2 急慢性低氧对大鼠CYP450蛋白表达的影响 | 第38-41页 |
| 3.2.1 实验动物 | 第38-39页 |
| 3.2.2 试剂及仪器 | 第39页 |
| 3.2.3 方法 | 第39页 |
| 3.2.4 实验结果 | 第39-41页 |
| 3.3 讨论 | 第41-42页 |
| 小结 | 第42-43页 |
| 第四章 急慢性低氧对大鼠Ⅱ相代谢酶UGT1A1和UGT1A6的影响 | 第43-52页 |
| 引言 | 第43-44页 |
| 4.1 低氧对大鼠UGT1A1活性和蛋白表达的影响 | 第44-47页 |
| 4.1.1 实验动物分组 | 第44页 |
| 4.1.2 仪器及试剂 | 第44页 |
| 4.1.3 溶液制备 | 第44页 |
| 4.1.4 动物分组与处理 | 第44页 |
| 4.1.5 低温差速离心法提取肝微粒体 | 第44页 |
| 4.1.6 孵育体系的组成 | 第44-45页 |
| 4.1.7 色谱条件 | 第45页 |
| 4.1.8 方法学验证 | 第45-46页 |
| 4.1.9 实验结果 | 第46-47页 |
| 4.2 急慢性低氧对大鼠UGT1A6活性和蛋白表达的影响 | 第47-51页 |
| 4.2.1 实验动物 | 第47页 |
| 4.2.2 仪器及试剂 | 第47页 |
| 4.2.3 溶液制备 | 第47-48页 |
| 4.2.4 动物分组与处理 | 第48页 |
| 4.2.5 低温差速离心法提取肝微粒体 | 第48页 |
| 4.2.6 孵育体系的组成 | 第48页 |
| 4.2.7 色谱条件 | 第48-49页 |
| 4.2.8 方法学验证 | 第49-50页 |
| 4.2.9 实验结果 | 第50-51页 |
| 4.3 讨论 | 第51页 |
| 小结 | 第51-52页 |
| 第五章 高原实地和模拟高原低氧对大鼠CYP450活性和蛋白表达的影响 | 第52-58页 |
| 引言 | 第52-53页 |
| 5.1 高原实地和模拟高原低氧对大鼠CYP450酶活性的影响 | 第53-55页 |
| 5.1.1 实验试剂和仪器 | 第53页 |
| 5.1.2 实验动物 | 第53页 |
| 5.1.3 动物分组 | 第53页 |
| 5.1.4 急进过程 | 第53页 |
| 5.1.5 样品取材及处理 | 第53页 |
| 5.1.6 低温差速离心法提取肝微粒体 | 第53页 |
| 5.1.7 孵育体系的组成 | 第53页 |
| 5.1.8 色谱条件 | 第53-54页 |
| 5.1.9 结果 | 第54-55页 |
| 5.2 高原实地和模拟高原低氧对大鼠CYP450蛋白表达的影响 | 第55-56页 |
| 5.2.1 实验试剂和仪器 | 第55页 |
| 5.2.2 实验动物 | 第55页 |
| 5.2.3 方法 | 第55页 |
| 5.2.4 动物分组 | 第55页 |
| 5.2.5 急进过程 | 第55页 |
| 5.2.6 样品取材及处理 | 第55页 |
| 5.2.7 实验结果 | 第55-56页 |
| 5.3 讨论 | 第56-57页 |
| 小结 | 第57-58页 |
| 第六章 低氧对大鼠肝细胞中CYP1A2、CYP2E1蛋白表达的影响及血清介质对其蛋白表达的调控研究 | 第58-65页 |
| 引言 | 第58-59页 |
| 6.1 材料 | 第59-60页 |
| 6.1.1 细胞株 | 第59页 |
| 6.1.2 动物 | 第59页 |
| 6.1.3 仪器与试剂 | 第59-60页 |
| 6.2 方法 | 第60-61页 |
| 6.2.1 大鼠低氧处理及血清获得 | 第60页 |
| 6.2.2 细胞培养 | 第60页 |
| 6.2.3 细胞分组及缺氧处理 | 第60页 |
| 6.2.4 CCK-8细胞增殖-毒性检测实验 | 第60页 |
| 6.2.5 AntibodyArray分析急慢性低氧大鼠血清中细胞因子的含量 | 第60-61页 |
| 6.2.6 Westernblot检测大鼠肝细胞中CYP1A2和CYP2E1的蛋白表达 | 第61页 |
| 6.3 实验结果 | 第61-63页 |
| 6.3.1 细胞存活率 | 第61页 |
| 6.3.2 急慢性低氧对大鼠血清中细胞因子的影响 | 第61-62页 |
| 6.3.3 低氧及低氧大鼠血清对大鼠肝细胞中CYP1A2和CYP2E1蛋白表达的影响 | 第62-63页 |
| 6.4 讨论 | 第63-64页 |
| 小结 | 第64-65页 |
| 全文总结及展望 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-73页 |
| 硕士期间发表的论文及参与的科研工作 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
