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转染Cx43cDNA对脑胶质瘤C6细胞侵袭性影响的体外研究

摘要第3-5页
Abstract第5-6页
目录第7-10页
符号说明第10-11页
第1章 前言第11-14页
第2章 实验材料与仪器第14-18页
    2.1 实验材料第14-16页
        2.1.1 主要购置试剂第14-15页
        2.1.2 主要配置溶液第15-16页
    2.2 主要仪器设备第16-18页
第3章 实验方法第18-30页
    3.1 C6 细胞培养第18-19页
        3.1.1 C6 细胞传代培养第18页
        3.1.2 C6 细胞冻存第18页
        3.1.3 C6 细胞复苏第18-19页
    3.2 确定 G418 筛选剂量第19页
    3.3 C6 细胞转染第19-20页
    3.4 稳定转染细胞株 mRNA 水平鉴定(RT-PCR)第20-23页
        3.4.1 引物序列第20页
        3.4.2 引物稀释第20-21页
        3.4.3 细胞总 RNA 提取(TRIzol 法)第21页
        3.4.4 样品总 RNA 鉴定和定量第21页
        3.4.5 逆转录合成 cDNA第21-22页
        3.4.6 PCR 扩增条件第22页
        3.4.7 1 %琼脂糖凝胶电泳第22-23页
        3.4.8 图像分析第23页
    3.5 Cx43 蛋白水平鉴定(Western blot)第23-26页
        3.5.1 样品总蛋白制备第23页
        3.5.2 样品蛋白含量测定第23-24页
        3.5.3 配胶(见表 2)第24页
        3.5.4 灌胶和上样第24页
        3.5.5 垂直电泳第24页
        3.5.6 转膜第24-25页
        3.5.7 样品蛋白免疫反应第25页
        3.5.8 样品蛋白化学发光及曝光第25-26页
        3.5.9 膜再生第26页
        3.5.10 内参蛋白β-actin 免疫反应第26页
        3.5.11 图像分析第26页
    3.6 体外 C6 细胞侵袭性实验(Transwell 侵袭模型+MTT 法)[25]第26-27页
    3.7 明胶酶谱法检测 MMP-2、MMP-9 活性[26]第27-29页
        3.7.1 样品蛋白制备第27页
        3.7.2 样品蛋白含量测定第27页
        3.7.3 试剂的配制第27-28页
        3.7.4 配胶(见表 3)第28页
        3.7.5 灌胶和上样第28页
        3.7.6 垂直电泳第28-29页
        3.7.7 孵育、染色及脱色第29页
        3.7.8 图像分析第29页
    3.8 MMP-9 蛋白水平检测(Western blot)第29页
    3.9 数据统计学处理第29-30页
第4章 结果第30-35页
    4.1 转染后细胞形态变化第30页
    4.2 转染后 Cx43 蛋白及 Cx43mRNA 表达的鉴定第30-32页
    4.3 各组细胞侵袭能力检测结果第32页
    4.4 明胶酶谱法检测各组细胞培养液中 MMP-2 及 MMP-9 活性第32-33页
    4.5 Western blot 检测 MMP-9 蛋白表达结果第33-35页
第5章 讨论第35-38页
    5.1 神经胶质瘤侵袭性分子机制研究第35页
    5.2 Cx43 与神经胶质瘤细胞侵袭第35-37页
    5.3 Cx43 与 MMPs第37页
    5.4 展望第37-38页
第6章 结论第38-39页
致谢第39-40页
参考文献第40-43页
综述 缝隙连接蛋白 43 与神经胶质瘤第43-51页
    1 GJ 与 Cx43第44-45页
    2 Cx43 与神经胶质瘤细胞生长抑制第45-46页
        2.1 Cx43 调节细胞生长:依赖 GJIC 机制第45页
        2.2 Cx43 调节细胞生长:不依赖于 GJIC 机制第45-46页
    3 Cx43 与神经胶质瘤细胞迁移第46-47页
        3.1 Cx43 与细胞迁移:依赖 GJIC 机制第46页
        3.2 Cx43 与细胞迁移:不依赖 GJIC 机制第46-47页
    4 结语第47页
    参考文献第47-51页

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