英文缩略词表 | 第9-10页 |
摘要 | 第10-13页 |
Abstract | 第13-16页 |
第1章 前言 | 第17-38页 |
1.1 代谢组学概述 | 第17-29页 |
1.1.1 代谢组学的概念、特点和分类 | 第17-20页 |
1.1.2 代谢组学研究流程 | 第20-29页 |
1.2 微重力对机体的直接影响 | 第29-30页 |
1.3 微重力诱导的应激对机体的影响 | 第30-31页 |
1.4 人参的抗应激和益智作用 | 第31-32页 |
1.5 研究目的、意义及研究内容 | 第32-34页 |
1.5.1 研究目的和意义 | 第32页 |
1.5.2 研究内容 | 第32-34页 |
参考文献 | 第34-38页 |
第2章 模拟微重力大鼠模型的建立及人参总皂苷干预 | 第38-62页 |
2.1 药品与试剂 | 第39页 |
2.2 仪器与设备 | 第39-40页 |
2.3 实验动物 | 第40页 |
2.4 实验方法 | 第40-48页 |
2.4.1 动物分组及给药 | 第40页 |
2.4.2 模拟微重力大鼠模型的建立 | 第40-41页 |
2.4.3 体重、摄食及摄水量测定 | 第41-42页 |
2.4.4 穿梭箱测试 | 第42页 |
2.4.5 胸腺、肾上腺、脾脏的采集及脏器指数计算 | 第42-43页 |
2.4.6 血浆皮质酮水平及尼氏体染色 | 第43页 |
2.4.7 人参皂苷提取物的制备及含量测定 | 第43-48页 |
2.4.8 数据统计处理 | 第48页 |
2.5 实验结果 | 第48-55页 |
2.5.1 体重 | 第48-49页 |
2.5.2 摄食和摄水量 | 第49-51页 |
2.5.3 穿梭箱测试 | 第51-53页 |
2.5.4 尾吊对大鼠脏器指数的影响 | 第53-55页 |
2.5.5 尼氏体染色 | 第55页 |
2.5.6 皮质酮水平 | 第55页 |
2.6 讨论 | 第55-57页 |
2.6.1 模型建立 | 第55-56页 |
2.6.2 摄食、摄水和体重 | 第56页 |
2.6.3 穿梭箱测试和血浆皮质酮水平 | 第56-57页 |
2.6.4 免疫功能 | 第57页 |
2.6.5 海马神经元 | 第57页 |
2.7 本章小结 | 第57-59页 |
参考文献 | 第59-62页 |
第3章 基于UPLC-QTOF-MS的非靶向代谢组学分析方法的建立 | 第62-93页 |
3.1 药品及试剂 | 第62页 |
3.2 仪器和设备 | 第62-63页 |
3.3 实验方法 | 第63-69页 |
3.3.1 实验动物和样本采集 | 第63-64页 |
3.3.2 尿液样品UPLC-QTOF-MS分析方法的建立 | 第64-66页 |
3.3.3 血浆样品UPLC-QTOF-MS分析方法的建立 | 第66-69页 |
3.3.4 海马样品UPLC-QTOF-MS分析方法的建立 | 第69页 |
3.4 结果 | 第69-89页 |
3.4.1 尿液样品分析方法优化 | 第69-81页 |
3.4.2 血浆样品分析方法优化 | 第81-88页 |
3.4.3 海马样品分析方法建立 | 第88-89页 |
3.5 讨论 | 第89-91页 |
3.5.1 尿液样品 | 第89-90页 |
3.5.2 血浆和海马组织样品 | 第90-91页 |
3.6 本章小结 | 第91-92页 |
参考文献 | 第92-93页 |
第4章 基于非靶向代谢组学的人参总皂苷改善模拟微重力导致的学习记忆功能减退机制研究 | 第93-122页 |
4.1 药品及试剂 | 第94页 |
4.2 仪器与设备 | 第94页 |
4.3 实验动物 | 第94页 |
4.4 实验方法 | 第94-97页 |
4.4.1 模拟微重力大鼠模型的建立及药物干预 | 第94页 |
4.4.2 尿液、血浆及海马组织样品的采集和前处理 | 第94-95页 |
4.4.3 尿肌酐含量测定方法 | 第95页 |
4.4.4 质控样品制备 | 第95页 |
4.4.5 样品分析 | 第95-96页 |
4.4.6 数据处理及生物标志物结构鉴定 | 第96-97页 |
4.5 结果 | 第97-115页 |
4.5.1 尿肌酐含量 | 第97-100页 |
4.5.2 代表性色谱图 | 第100-104页 |
4.5.3 分析方法验证 | 第104-106页 |
4.5.4 模式识别和潜在生物标志物鉴定 | 第106-114页 |
4.5.5 生物标志物结构鉴定 | 第114-115页 |
4.6 讨论 | 第115-118页 |
4.6.1 尿液中代谢物水平校正 | 第115-116页 |
4.6.2 模拟微重力对整体代谢轮廓的影响 | 第116-118页 |
4.7 本章小结 | 第118-119页 |
参考文献 | 第119-122页 |
第5章 基于靶向代谢组学的人参总皂苷改善模拟微重力导致的学习记忆功能减退机制研究 | 第122-172页 |
5.1 药品及试剂 | 第123页 |
5.2 仪器与设备 | 第123-124页 |
5.3 实验动物 | 第124页 |
5.4 实验方法 | 第124-132页 |
5.4.1 模拟微重力大鼠模型的建立及药物干预 | 第124页 |
5.4.2 尿液、血浆及海马组织样品的采集和前处理 | 第124页 |
5.4.3 靶向验证研究 | 第124-128页 |
5.4.4 海马组织神经递质测定 | 第128-130页 |
5.4.5 血浆氨基酸水平测定 | 第130-132页 |
5.5 实验结果 | 第132-164页 |
5.5.1 靶向验证研究 | 第132-147页 |
5.5.2 海马组织神经递质测定 | 第147-155页 |
5.5.3 血浆氨基酸水平测定 | 第155-164页 |
5.6 讨论 | 第164-168页 |
5.6.1 靶向验证研究 | 第164-165页 |
5.6.2 海马神经递质 | 第165-166页 |
5.6.3 血浆氨基酸 | 第166-168页 |
5.6.4 其他受影响的代谢通路 | 第168页 |
5.7 本章小结 | 第168-169页 |
参考文献 | 第169-172页 |
第6章 慢性睡眠干扰对学习记忆能力影响的代谢组学研究 | 第172-192页 |
6.1 药品及试剂 | 第173页 |
6.2 仪器和设备 | 第173页 |
6.3 实验方法 | 第173-177页 |
6.3.1 实验动物 | 第173-174页 |
6.3.2 慢性睡眠干扰小鼠模型制备 | 第174-175页 |
6.3.3 行为学检测 | 第175-176页 |
6.3.4 血清和脑样品的采集和制备 | 第176页 |
6.3.5 统计分析 | 第176-177页 |
6.3.6 LC-MS条件 | 第177页 |
6.3.7 数据采集和预处理 | 第177页 |
6.3.8 多元统计分析 | 第177页 |
6.3.9 生物标志物结构鉴定 | 第177页 |
6.4 实验结果 | 第177-185页 |
6.4.1 行为学测试,体重和生化指标 | 第177-179页 |
6.4.2 方法重复性和可靠性 | 第179-180页 |
6.4.3 模式识别和潜在生物标志物鉴定 | 第180-185页 |
6.5 讨论 | 第185-188页 |
6.5.1 行为学评价 | 第185-186页 |
6.5.2 生化指标 | 第186-187页 |
6.5.3 血清代谢物对慢性睡眠干扰的反应 | 第187-188页 |
6.6 本章小结 | 第188-189页 |
参考文献 | 第189-192页 |
第7章 全文总结与展望 | 第192-196页 |
7.1 主要研究结果 | 第192-193页 |
7.2 创新点 | 第193-194页 |
7.3 展望 | 第194-195页 |
参考文献 | 第195-196页 |
附录 | 第196-197页 |
致谢 | 第197-198页 |
读博期间的主要科研成果 | 第198-200页 |