| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 符号说明 | 第9-10页 |
| 前言 | 第10-12页 |
| 第1章 绪论 | 第12-22页 |
| 1.1 干细胞概念及分类 | 第12页 |
| 1.1.1 概念 | 第12页 |
| 1.1.2 干细胞的分类 | 第12页 |
| 1.2 肿瘤干细胞理论的提出以及来源假说 | 第12-13页 |
| 1.3 干细胞与肿瘤干细胞的关系与区别 | 第13-14页 |
| 1.3.1 干细胞与肿瘤干细胞的关系 | 第13页 |
| 1.3.2 肿瘤干细胞与干细胞的区别 | 第13-14页 |
| 1.4 肿瘤干细胞的主要调控通路 | 第14-15页 |
| 1.4.1 Wnt通路 | 第14页 |
| 1.4.2 Notch通路 | 第14页 |
| 1.4.3 Shh通路 | 第14-15页 |
| 1.5 胃癌干细胞 | 第15-17页 |
| 1.5.1 胃癌干细胞的生物学特性 | 第15页 |
| 1.5.2 胃癌干细胞的来源 | 第15-16页 |
| 1.5.3 胃癌干细胞的微环境 | 第16页 |
| 1.5.4 胃癌干细胞的分离和鉴定 | 第16-17页 |
| 1.5.5 胃癌干细胞的表面标记物 | 第17页 |
| 1.6 干细胞与肿瘤干细胞的相关标记物 | 第17-19页 |
| 1.6.1 ALDH1 | 第17页 |
| 1.6.2 CD34 | 第17-18页 |
| 1.6.3 CD105 | 第18页 |
| 1.6.4 Oct4 | 第18页 |
| 1.6.5 CD14 | 第18-19页 |
| 1.7 消化道肿瘤的特异性标记物CD133 | 第19-20页 |
| 1.8 三氧化二砷的特点以及它对恶性肿瘤的作用 | 第20-21页 |
| 1.8.1 三氧化二砷的特点 | 第20页 |
| 1.8.2 三氧化二砷的抗肿瘤机制 | 第20-21页 |
| 1.9 结语 | 第21-22页 |
| 第2章 胃癌标记物的实验研究 | 第22-26页 |
| 2.1 材料、仪器和试剂 | 第22-24页 |
| 2.1.1 标本来源 | 第22页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第22-23页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第23页 |
| 2.1.4 主要溶液配制方法 | 第23-24页 |
| 2.2 方法 | 第24-25页 |
| 2.2.1 免疫荧光鉴定 | 第24页 |
| 2.2.2 实验结果判定 | 第24-25页 |
| 2.3 结果 | 第25页 |
| 2.4 小结 | 第25-26页 |
| 第3章 胃癌组织中CD133~+/CD14~+的表达及其临床意义 | 第26-37页 |
| 3.1 材料、仪器和试剂 | 第26-28页 |
| 3.1.1 标本来源 | 第26页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第26-27页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第27页 |
| 3.1.4 主要溶液配制方法 | 第27-28页 |
| 3.2 方法 | 第28-29页 |
| 3.2.1 间接荧光抗体技术 | 第28-29页 |
| 3.2.2 实验结果判定 | 第29页 |
| 3.2.3 统计学方法 | 第29页 |
| 3.3 结果 | 第29-36页 |
| 3.3.1 病例特点 | 第29-30页 |
| 3.3.2 CD133和CD14蛋白的表达与临床病理特征之间的关系 | 第30-33页 |
| 3.3.3 CD133~+/CD14~+蛋白的表达与临床病理特征之间的关系 | 第33-35页 |
| 3.3.4 人胃癌中CD14和CD133表达的相互关系 | 第35-36页 |
| 3.4 小结 | 第36-37页 |
| 第4章 原代胃癌细胞内CD14与CD133基因的表达情况 | 第37-46页 |
| 4.1 材料、仪器和试剂 | 第37-39页 |
| 4.1.1 标本来源 | 第37页 |
| 4.1.2 主要仪器 | 第37-38页 |
| 4.1.3 主要试剂与耗材 | 第38页 |
| 4.1.4 主要溶液配制方法 | 第38-39页 |
| 4.2 方法 | 第39-42页 |
| 4.2.1 胃癌细胞的分离和培养 | 第39页 |
| 4.2.2 细胞的形态学观察 | 第39-40页 |
| 4.2.3 RNA的提取 | 第40页 |
| 4.2.4 逆转录cDNA | 第40-41页 |
| 4.2.5 引物设计 | 第41页 |
| 4.2.6 实时荧光定量核酸扩增检测 | 第41-42页 |
| 4.2.7 统计学方法 | 第42页 |
| 4.3 结果 | 第42-45页 |
| 4.3.1 原代细胞培养观察 | 第42-43页 |
| 4.3.2 RNA浓度检测结果 | 第43-44页 |
| 4.3.3 实时荧光定量核酸扩增检测结果 | 第44-45页 |
| 4.4 小结 | 第45-46页 |
| 第5章 三氧化二砷对胃癌细胞增殖影响的检测 | 第46-53页 |
| 5.1 材料、仪器和试剂 | 第46-47页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第46页 |
| 5.1.2 主要仪器 | 第46页 |
| 5.1.3 主要试剂与耗材 | 第46-47页 |
| 5.1.4 主要溶液配制方法 | 第47页 |
| 5.2 方法 | 第47-49页 |
| 5.2.1 不同浓度的As_2O_3抑制细胞生长的观察 | 第47-48页 |
| 5.2.2 MTT法进行细胞增殖检测 | 第48页 |
| 5.2.3 TUNEL法进行细胞凋亡检测 | 第48-49页 |
| 5.2.4 统计学方法 | 第49页 |
| 5.3 结果 | 第49-52页 |
| 5.3.1 As_2O_3对NCI-N87细胞生长的影响 | 第49-51页 |
| 5.3.2 As_2O_3对NCI-N87细胞增殖的影响 | 第51页 |
| 5.3.3 As_2O_3对NCI-N87细胞凋亡的影响 | 第51-52页 |
| 5.4 小结 | 第52-53页 |
| 第6章 讨论 | 第53-57页 |
| 6.1 关于胃癌细胞与干细胞标记物的关系 | 第53页 |
| 6.2 关于联合检测CD14和CD133在人胃癌干细胞中的表达 | 第53-55页 |
| 6.3 关于CD14和CD133的阳性表达与临床病理参数之间的关系 | 第55-56页 |
| 6.4 关于三氧化二砷对胃癌细胞系NCI-N87生长抑制的作用 | 第56-57页 |
| 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第68页 |
