| 学位论文数据集 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-9页 |
| ABSTRACT | 第9-14页 |
| 符号说明 | 第25-26页 |
| 第一章 绪论 | 第26-42页 |
| 1.1 基因治疗 | 第26-28页 |
| 1.2 基因传递系统 | 第28-32页 |
| 1.2.1 用于传递基因的病毒载体 | 第29页 |
| 1.2.2 非病毒基因传递系统 | 第29-30页 |
| 1.2.3 化学法制备的非病毒基因载体 | 第30-32页 |
| 1.2.3.1 通过电荷吸引络合DNA的聚阳离子载体 | 第30-32页 |
| 1.2.3.2 DNA封装技术 | 第32页 |
| 1.2.3.3 DNA吸收 | 第32页 |
| 1.3 原子转移自由基聚合在生物医用材料方面的应用 | 第32-40页 |
| 1.3.1 ATRP法制备生物活性表面 | 第33-35页 |
| 1.3.2 ATRP法应用于制备阳离子聚合物基因载体 | 第35-40页 |
| 1.3.2.1 线型均聚物基因载体 | 第36-37页 |
| 1.3.2.2 线型嵌段共聚物基因载体 | 第37-38页 |
| 1.3.2.3 梳状共聚物基因载体 | 第38-39页 |
| 1.3.2.4 星状聚合物基因载体 | 第39-40页 |
| 1.4 课题的目的及意义 | 第40-42页 |
| 第二章 可快速进行细胞染色的双功能基因载体 | 第42-58页 |
| 2.1 前言 | 第42页 |
| 2.2 实验部分 | 第42-47页 |
| 2.2.1 实验原料与试剂 | 第42-44页 |
| 2.2.2 实验仪器与设备 | 第44页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第44页 |
| 2.2.4 双功能阳离子基因载体PBI-PGEA的制备 | 第44-45页 |
| 2.2.5 聚合物的化学及光谱学测试 | 第45页 |
| 2.2.6 载体的细胞标记性能测试 | 第45-46页 |
| 2.2.7 载体的转染能力测试 | 第46-47页 |
| 2.2.7.1 PBI-PGE-pDNA复合体的琼脂糖凝胶电泳测试 | 第46页 |
| 2.2.7.2 PBI-PGEA/pDNA复合体的粒径及电位测试 | 第46-47页 |
| 2.2.7.3 PBI-PGEA/pDNA复合体的转染能力测试 | 第47页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第47-57页 |
| 2.3.1 双功能阳离子基因载体PBI-PGEA的制备 | 第47-49页 |
| 2.3.2 PBI-PGEA的光谱性质 | 第49-50页 |
| 2.3.3 PBI-PGEA的细胞标记性能测试 | 第50-54页 |
| 2.3.4 PBI-PGEA的转染能力测试 | 第54-57页 |
| 2.4 小结 | 第57-58页 |
| 第三章 基于普鲁兰多糖构建可生物剪切的肝靶向性基因载体 | 第58-80页 |
| 3.1 前言 | 第58页 |
| 3.2 实验部分 | 第58-64页 |
| 3.2.1 实验原料与试剂 | 第59-60页 |
| 3.2.2 实验仪器与设备 | 第60页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第60页 |
| 3.2.4 可生物剪切的肝靶向性阳离子基因载体PuPGEA的制备 | 第60-61页 |
| 3.2.4.1 可生物剪切的ATRP引发位点的引入 | 第60-61页 |
| 3.2.4.2 通过ATRP法合成普鲁兰基阳离子基因载体 | 第61页 |
| 3.2.5 阳离子基因载体PuPGEA的化学表征 | 第61-62页 |
| 3.2.6 聚合物/pDNA复合体的生理物理学测试 | 第62页 |
| 3.2.6.1 琼脂糖凝胶电泳测试 | 第62页 |
| 3.2.6.2 粒径及Zeta电位测试 | 第62页 |
| 3.2.6.3 PuPGEA/pDNA颗粒形态测试 | 第62页 |
| 3.2.7 载体的转染能力及细胞毒性测试 | 第62-63页 |
| 3.2.7.1 细胞毒性测试 | 第63页 |
| 3.2.7.2 体外转染效率测试 | 第63页 |
| 3.2.8 载体的肝靶向性测试 | 第63-64页 |
| 3.2.9 载体的溶血性测试 | 第64页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第64-79页 |
| 3.3.1 可生物剪切的肝靶向性阳离子基因载体PuPGEA的制备及化学表征 | 第64-68页 |
| 3.3.1.1 阳离子基因载体PuPGEA的制备及核磁表征 | 第64-67页 |
| 3.3.1.2 阳离子基因载体PuPGEA的分子量表征 | 第67-68页 |
| 3.3.1.3 阳离子基因载体PuPGEA的生物可剪切性测试 | 第68页 |
| 3.3.2 载体与DNA复合体的生理物理学表征 | 第68-71页 |
| 3.3.3 载体的细胞毒性及转染能力表征 | 第71-75页 |
| 3.3.3.1 载体的细胞毒性测试 | 第71-73页 |
| 3.3.3.2 载体的体外基因转染效率 | 第73-75页 |
| 3.3.4 载体的肝靶向性测试 | 第75-77页 |
| 3.3.5 载体的溶血性测试 | 第77-79页 |
| 3.4 小结 | 第79-80页 |
| 第四章 基于氧化石墨烯构建可生物剪切的基因/药物载体 | 第80-102页 |
| 4.1 前言 | 第80页 |
| 4.2 实验部分 | 第80-87页 |
| 4.2.1 实验原料与试剂 | 第80-82页 |
| 4.2.2 实验仪器与设备 | 第82页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第82页 |
| 4.2.4 氧化石墨烯及可生物剪切的阳离子基因载体SS-GPD的制备 | 第82-83页 |
| 4.2.4.1 氧化石墨烯的制备 | 第82-83页 |
| 4.2.4.2 可生物剪切的ATRP引发位点的引入 | 第83页 |
| 4.2.4.3 可生物剪切的PDMAEMA功能化的氧化石墨烯的合成 | 第83页 |
| 4.2.5 氧化石墨烯及阳离子基因载体SS-GPD的表征 | 第83-84页 |
| 4.2.5.1 X射线光电子能谱测试 | 第83-84页 |
| 4.2.5.2 原子力显微镜测试 | 第84页 |
| 4.2.5.3 粒径及Zeta电位测试 | 第84页 |
| 4.2.5.4 样品的分散性测试 | 第84页 |
| 4.2.5.5 PDMAEMA链的分子量测试 | 第84页 |
| 4.2.6 载体与DNA复合体的表征 | 第84-85页 |
| 4.2.6.1 琼脂糖凝胶电泳测试 | 第85页 |
| 4.2.6.2 粒径及Zeta电位测试 | 第85页 |
| 4.2.6.3 颗粒形态测试 | 第85页 |
| 4.2.7 载体的细胞毒性及转染能力测试 | 第85-86页 |
| 4.2.7.1 细胞毒性测试 | 第85-86页 |
| 4.2.7.2 体外转染效率测试 | 第86页 |
| 4.2.8 载体的载药能力测试 | 第86-87页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第87-99页 |
| 4.3.1 可生物剪切的阳离子基因载体SS-GPD的制备及表征 | 第87-91页 |
| 4.3.2 载体与DNA复合体的表征 | 第91-94页 |
| 4.3.3 载体的细胞毒性及转染能力表征 | 第94-96页 |
| 4.3.3.1 载体的细胞毒性测试 | 第94-95页 |
| 4.3.3.2 体外基因转染效率测试 | 第95-96页 |
| 4.3.4 载体的载药能力测试 | 第96-99页 |
| 4.4 小结 | 第99-102页 |
| 第五章 基于季戊四醇构建高性能阳离子基因载体用于减轻小鼠心脏纤维化 | 第102-124页 |
| 5.1 前言 | 第102-103页 |
| 5.2 实验部分 | 第103-108页 |
| 5.2.1 实验原料与试剂 | 第103-104页 |
| 5.2.2 实验仪器与设备 | 第104页 |
| 5.2.3 实验方法 | 第104页 |
| 5.2.4 阳离子基因载体s-PGEA的制备 | 第104-105页 |
| 5.2.5 载体的化学表征 | 第105页 |
| 5.2.6 载体与miRNA复合体的生理物理学测试 | 第105-106页 |
| 5.2.6.1 粒径及Zeta电位测试 | 第106页 |
| 5.2.6.2 原子力显微镜(AFM)测试 | 第106页 |
| 5.2.6.3 载体的蛋白吸附实验 | 第106页 |
| 5.2.7 载体的转染能力及细胞毒性测试 | 第106-107页 |
| 5.2.7.1 细胞毒性测试 | 第106页 |
| 5.2.7.2 体外基因传递效率测试 | 第106-107页 |
| 5.2.8 载体携带miRNA减轻心脏纤维化的动物活体实验 | 第107-108页 |
| 5.2.8.1 验证载体/miRNA复合体在心脏部位聚集 | 第107页 |
| 5.2.8.2 载体/miRNA减轻小鼠心脏纤维化实验 | 第107-108页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第108-122页 |
| 5.3.1 阳离子基因载体s-PGEA的制备及化学表征 | 第108-109页 |
| 5.3.2 载体的生理物理学测试 | 第109-111页 |
| 5.3.2.1 粒度及电位测试 | 第109-110页 |
| 5.3.2.2 原子力显微镜(AFM)测试 | 第110-111页 |
| 5.3.2.3 蛋白吸附实验 | 第111页 |
| 5.3.3 载体的转染能力及细胞毒性测试 | 第111-116页 |
| 5.3.3.1 细胞毒性测试 | 第111-113页 |
| 5.3.3.2 基因传递能力测试 | 第113-116页 |
| 5.3.4 载体携带miRNA减轻心脏纤维化的动物活体实验 | 第116-122页 |
| 5.3.4.1 验证载体/miRNA在心脏部位聚集 | 第116-119页 |
| 5.3.4.2 验证载体/miRNA减轻小鼠心脏纤维化 | 第119-122页 |
| 5.4 小结 | 第122-124页 |
| 第六章 结论 | 第124-126页 |
| 参考文献 | 第126-144页 |
| 致谢 | 第144-146页 |
| 研究成果及发表的学术论文 | 第146-148页 |
| 作者简介 | 第148-150页 |
| 导师简介 | 第150-151页 |
| 博士研究生学位论文答辩委员会决议书 | 第151-152页 |
