| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 1 引言 | 第13-19页 |
| 2 材料和方法 | 第19-33页 |
| 2.1 试验材料 | 第19页 |
| 2.2 试验方法 | 第19-33页 |
| 2.2.1 棉苗、拟南芥苗培育及黄萎病菌接菌处理 | 第19-20页 |
| 2.2.2 RNA、DNA提取及cDNA的合成 | 第20-22页 |
| 2.2.3 实时荧光定量PCR表达分析 | 第22-23页 |
| 2.2.4 多胺、植保素camalexin、氨基酸对黄萎病菌的抑菌活性测定 | 第23-24页 |
| 2.2.5 植物激素水杨酸、植保素camalexin含量测定 | 第24-25页 |
| 2.2.6 TRV基因沉默载体构建及农杆菌转化 | 第25-26页 |
| 2.2.7 多胺含量、多胺氧化酶活性测定 | 第26-27页 |
| 2.2.8 棉花多胺氧化酶生化特性 | 第27-32页 |
| 2.2.9 过氧化氢含量及过氧化氢酶活力测定 | 第32页 |
| 2.2.10外源药剂添加、氨基酸含量和电导率测定 | 第32-33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-72页 |
| 3.1 棉花PAO通过精胺和植保素信号参与植物的黄萎病抗性 | 第33-54页 |
| 3.1.1 GhPAO在黄萎病菌及植物激素诱导下的表达模式 | 第33-35页 |
| 3.1.2 转GhPAO拟南芥的黄萎病抗性鉴定及功能分析 | 第35-46页 |
| 3.1.3 棉花多胺氧化酶GhPAO的生化特性 | 第46-48页 |
| 3.1.4 沉默GhPAO对棉花黄萎病抗性的影响 | 第48-50页 |
| 3.1.5 体外多胺对黄萎病菌生长的影响 | 第50-52页 |
| 3.1.6 黄萎病菌胁迫下抗感棉花品种中多胺水平差异分析 | 第52-54页 |
| 3.2 棉花SAMDC通过水杨酸和亮氨酸信号参与植物的黄萎病抗性 | 第54-63页 |
| 3.2.1 棉花SAMDC/SPMS在黄萎病菌及激素诱导下的表达模式 | 第54-55页 |
| 3.2.2 棉花SAMDC/SPMS沉默植株的抗性表现 | 第55-57页 |
| 3.2.3 过表达棉花SAMDC/SPMS拟南芥的抗性表现 | 第57-60页 |
| 3.2.4 转GhSAMDC/GhSPMS拟南芥在黄萎病菌胁迫下的氨基酸水平变化 | 第60页 |
| 3.2.5 GhSAMDC/GhSPMS调控的黄萎病抗性与水杨酸途径的关联分析 | 第60-62页 |
| 3.2.6 外源添加腐胺、水杨酸、亮氨酸对棉花黄萎病抗性的影响 | 第62-63页 |
| 3.3 棉花ACL5通过调控热精胺水平参与植株的茎伸长和黄萎病抗性 | 第63-72页 |
| 3.3.1 过表达GhACL5对拟南芥株高的影响 | 第63-67页 |
| 3.3.2 转GhACL5拟南芥株高的提高与发芽早晚的关系 | 第67-68页 |
| 3.3.3 沉默GhACL5对棉花株高的影响 | 第68-69页 |
| 3.3.4 体外热精胺对黄萎病菌生长的抑制效应 | 第69-70页 |
| 3.3.5 棉花GhACL5在黄萎病菌及植物激素诱导下的表达模式 | 第70-71页 |
| 3.3.6 沉默GhACL5对棉花黄萎病抗性的影响 | 第71-72页 |
| 4 讨论 | 第72-78页 |
| 4.1 转GhPAO拟南芥在黄萎病菌胁迫下调控多胺水平的策略 | 第72-73页 |
| 4.2 精胺增强植物对黄萎病抗性的分子机制 | 第73-74页 |
| 4.3 GhPAO调控的植物抗黄萎病机制 | 第74-75页 |
| 4.4 水杨酸和亮氨酸相关信号参与GhSAMDC调控的精胺抗性 | 第75-76页 |
| 4.5 GhACL5通过调控热精胺水平以提高株高和植物抗性 | 第76-78页 |
| 5 结论 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-90页 |
| 附录I | 第90-94页 |
| 相关学术论文 | 第94-95页 |
| 作者简历 | 第95-96页 |
| 致谢 | 第96-97页 |
