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啶氧菌酯农残检测及其在粮谷物中应用的研究

摘要第5-8页
ABSTRACT第8-11页
第1章 绪论第17-33页
    1.1 甲氧基丙烯酸酯类杀菌剂的生物活性及危害第17-18页
    1.2 啶氧菌酯概述第18-20页
        1.2.1 啶氧菌酯在农业生产中的应用第18-19页
        1.2.2 啶氧菌酯的理化性质第19页
        1.2.3 啶氧菌酯的毒性第19-20页
    1.3 研究现状第20-30页
        1.3.1 样品的前处理方法第20-27页
            1.3.1.1 分散固相萃取(QuEChERS)第20-21页
            1.3.1.2 超声波辅助萃取(UAE)第21-22页
            1.3.1.3 超临界流体萃取(SFE)第22-23页
            1.3.1.4 凝胶渗透色谱(GPC)第23-24页
            1.3.1.5 加速溶剂萃取(ASE)第24页
            1.3.1.6 微波辅助萃取(MAE)第24-25页
            1.3.1.7 固相萃取技术(SPE)第25页
            1.3.1.8 固相微萃取(SPME)第25-26页
            1.3.1.9 其他萃取方法第26-27页
        1.3.2 农残检测方法研究进展第27-30页
            1.3.2.1 色谱分析方法第27-28页
            1.3.2.2 光谱分析方法第28-29页
            1.3.2.3 化学分析方法第29页
            1.3.2.4 生物分析方法第29-30页
    1.4 啶氧菌酯的相关标准第30-31页
    1.5 课题的研究意义与内容第31-33页
        1.5.1 研究意义第31页
        1.5.2 研究内容第31-33页
第2章 分散固相萃取-高效液相色谱法测定小麦中啶氧菌酯第33-48页
    2.1 前言第33页
    2.2 实验材料与仪器第33-35页
        2.2.1 实验材料与试剂第33-34页
        2.2.2 实验仪器与设备第34-35页
    2.3 实验方法与步骤第35-37页
        2.3.1 液相色谱条件第35页
        2.3.2 啶氧菌酯标准曲线的绘制第35页
        2.3.3 样品前处理第35页
        2.3.4 分散吸附剂种类的选择第35-36页
        2.3.5 分散吸附剂加入量的选择第36页
        2.3.6 样品加入量的选择第36页
        2.3.7 加水量的选择第36页
        2.3.8 方法的重复性实验第36页
        2.3.9 方法的回收率实验第36-37页
    2.4 结果与讨论第37-47页
        2.4.1 分散吸附剂种类的选择第37页
        2.4.2 分散吸附剂用量的优化第37-38页
        2.4.3 样品加入量的优化第38-39页
        2.4.4 加水量的优化第39页
        2.4.5 标准曲线的绘制第39-41页
        2.4.6 响应面分析优化啶氧菌酯的提取条件第41-45页
            2.4.6.1 响应面试验因素水平的选择第41页
            2.4.6.2 响应面试验方案设计及结果分析第41-45页
            2.4.6.3 响应面回归模型的建立第45页
            2.4.6.4 各因素水平的优化第45页
        2.4.7 方法的重复性实验第45-46页
        2.4.8 方法的回收率实验第46-47页
        2.4.9 样品测定第47页
    2.5 本章小结第47-48页
第3章 超声波辅助-气相色谱法检测大米中啶氧菌酯第48-60页
    3.1 前言第48页
    3.2 实验材料与仪器第48-49页
        3.2.1 实验材料与试剂第48-49页
        3.2.2 实验仪器与设备第49页
    3.3 实验方法与步骤第49-52页
        3.3.1 色谱条件第49页
        3.3.2 啶氧菌酯标准曲线的绘制第49-50页
        3.3.3 样品前处理第50页
        3.3.4 提取剂种类的选择第50页
        3.3.5 提取剂用量的选择第50页
        3.3.6 NaCl加入量的选择第50-51页
        3.3.7 分散剂用量的选择第51页
        3.3.8 超声处理时间的选择第51页
        3.3.9 方法的重复性实验第51页
        3.3.10 方法的回收率实验第51页
        3.3.11 结果计算公式第51-52页
    3.4 实验结果与讨论第52-59页
        3.4.1 样品前处理条件的选择第52-55页
            3.4.1.1 提取剂种类的选择第52页
            3.4.1.2 提取剂用量的优化第52-53页
            3.4.1.3 NaCl加入量的优化第53-54页
            3.4.1.4 分散剂用量的优化第54页
            3.4.1.5 超声处理时间的优化第54-55页
        3.4.2 啶氧菌酯标准曲线的绘制第55-56页
        3.4.3 正交分析优化提取条件第56-58页
        3.4.4 方法的重复性实验第58页
        3.4.5 方法的回收率实验第58-59页
        3.4.6 样品的测定第59页
    3.5 本章小结第59-60页
第4章 紫外可见分光光度法测定燕麦中的啶氧菌酯第60-69页
    4.1 前言第60页
    4.2 实验材料与仪器第60页
        4.2.1 实验材料与试剂第60页
        4.2.2 实验仪器与设备第60页
    4.3 实验方法与步骤第60-62页
        4.3.1 标准溶液的配制第60-61页
        4.3.2 狭缝宽度的选择第61页
        4.3.3 最大吸收波长的选择第61页
        4.3.4 标准曲线的绘制第61页
        4.3.5 样品的预处理第61-62页
        4.3.6 方法的精密度实验第62页
        4.3.7 方法回收率实验第62页
    4.4 实验结果与讨论第62-68页
        4.4.1 狭缝宽度的选择第62-63页
        4.4.2 最大吸收波长的选择第63页
        4.4.3 标准曲线的绘制第63-64页
        4.4.4 提取条件的选择第64-66页
            4.4.4.1 分散吸附剂用量的选择第64-65页
            4.4.4.2 加样量的选择第65-66页
            4.4.4.3 加水量的选择第66页
        4.4.5 方法的重复性实验第66-67页
        4.4.6 方法回收率实验第67-68页
        4.4.7 样品测定第68页
    4.5 本章小结第68-69页
第5章 结论与展望第69-71页
    5.1 结论第69-70页
    5.2 展望第70-71页
参考文献第71-81页
硕士期间发表的论文第81-82页
致谢第82页

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