摘要 | 第5-8页 |
ABSTRACT | 第8-11页 |
第1章 绪论 | 第17-33页 |
1.1 甲氧基丙烯酸酯类杀菌剂的生物活性及危害 | 第17-18页 |
1.2 啶氧菌酯概述 | 第18-20页 |
1.2.1 啶氧菌酯在农业生产中的应用 | 第18-19页 |
1.2.2 啶氧菌酯的理化性质 | 第19页 |
1.2.3 啶氧菌酯的毒性 | 第19-20页 |
1.3 研究现状 | 第20-30页 |
1.3.1 样品的前处理方法 | 第20-27页 |
1.3.1.1 分散固相萃取(QuEChERS) | 第20-21页 |
1.3.1.2 超声波辅助萃取(UAE) | 第21-22页 |
1.3.1.3 超临界流体萃取(SFE) | 第22-23页 |
1.3.1.4 凝胶渗透色谱(GPC) | 第23-24页 |
1.3.1.5 加速溶剂萃取(ASE) | 第24页 |
1.3.1.6 微波辅助萃取(MAE) | 第24-25页 |
1.3.1.7 固相萃取技术(SPE) | 第25页 |
1.3.1.8 固相微萃取(SPME) | 第25-26页 |
1.3.1.9 其他萃取方法 | 第26-27页 |
1.3.2 农残检测方法研究进展 | 第27-30页 |
1.3.2.1 色谱分析方法 | 第27-28页 |
1.3.2.2 光谱分析方法 | 第28-29页 |
1.3.2.3 化学分析方法 | 第29页 |
1.3.2.4 生物分析方法 | 第29-30页 |
1.4 啶氧菌酯的相关标准 | 第30-31页 |
1.5 课题的研究意义与内容 | 第31-33页 |
1.5.1 研究意义 | 第31页 |
1.5.2 研究内容 | 第31-33页 |
第2章 分散固相萃取-高效液相色谱法测定小麦中啶氧菌酯 | 第33-48页 |
2.1 前言 | 第33页 |
2.2 实验材料与仪器 | 第33-35页 |
2.2.1 实验材料与试剂 | 第33-34页 |
2.2.2 实验仪器与设备 | 第34-35页 |
2.3 实验方法与步骤 | 第35-37页 |
2.3.1 液相色谱条件 | 第35页 |
2.3.2 啶氧菌酯标准曲线的绘制 | 第35页 |
2.3.3 样品前处理 | 第35页 |
2.3.4 分散吸附剂种类的选择 | 第35-36页 |
2.3.5 分散吸附剂加入量的选择 | 第36页 |
2.3.6 样品加入量的选择 | 第36页 |
2.3.7 加水量的选择 | 第36页 |
2.3.8 方法的重复性实验 | 第36页 |
2.3.9 方法的回收率实验 | 第36-37页 |
2.4 结果与讨论 | 第37-47页 |
2.4.1 分散吸附剂种类的选择 | 第37页 |
2.4.2 分散吸附剂用量的优化 | 第37-38页 |
2.4.3 样品加入量的优化 | 第38-39页 |
2.4.4 加水量的优化 | 第39页 |
2.4.5 标准曲线的绘制 | 第39-41页 |
2.4.6 响应面分析优化啶氧菌酯的提取条件 | 第41-45页 |
2.4.6.1 响应面试验因素水平的选择 | 第41页 |
2.4.6.2 响应面试验方案设计及结果分析 | 第41-45页 |
2.4.6.3 响应面回归模型的建立 | 第45页 |
2.4.6.4 各因素水平的优化 | 第45页 |
2.4.7 方法的重复性实验 | 第45-46页 |
2.4.8 方法的回收率实验 | 第46-47页 |
2.4.9 样品测定 | 第47页 |
2.5 本章小结 | 第47-48页 |
第3章 超声波辅助-气相色谱法检测大米中啶氧菌酯 | 第48-60页 |
3.1 前言 | 第48页 |
3.2 实验材料与仪器 | 第48-49页 |
3.2.1 实验材料与试剂 | 第48-49页 |
3.2.2 实验仪器与设备 | 第49页 |
3.3 实验方法与步骤 | 第49-52页 |
3.3.1 色谱条件 | 第49页 |
3.3.2 啶氧菌酯标准曲线的绘制 | 第49-50页 |
3.3.3 样品前处理 | 第50页 |
3.3.4 提取剂种类的选择 | 第50页 |
3.3.5 提取剂用量的选择 | 第50页 |
3.3.6 NaCl加入量的选择 | 第50-51页 |
3.3.7 分散剂用量的选择 | 第51页 |
3.3.8 超声处理时间的选择 | 第51页 |
3.3.9 方法的重复性实验 | 第51页 |
3.3.10 方法的回收率实验 | 第51页 |
3.3.11 结果计算公式 | 第51-52页 |
3.4 实验结果与讨论 | 第52-59页 |
3.4.1 样品前处理条件的选择 | 第52-55页 |
3.4.1.1 提取剂种类的选择 | 第52页 |
3.4.1.2 提取剂用量的优化 | 第52-53页 |
3.4.1.3 NaCl加入量的优化 | 第53-54页 |
3.4.1.4 分散剂用量的优化 | 第54页 |
3.4.1.5 超声处理时间的优化 | 第54-55页 |
3.4.2 啶氧菌酯标准曲线的绘制 | 第55-56页 |
3.4.3 正交分析优化提取条件 | 第56-58页 |
3.4.4 方法的重复性实验 | 第58页 |
3.4.5 方法的回收率实验 | 第58-59页 |
3.4.6 样品的测定 | 第59页 |
3.5 本章小结 | 第59-60页 |
第4章 紫外可见分光光度法测定燕麦中的啶氧菌酯 | 第60-69页 |
4.1 前言 | 第60页 |
4.2 实验材料与仪器 | 第60页 |
4.2.1 实验材料与试剂 | 第60页 |
4.2.2 实验仪器与设备 | 第60页 |
4.3 实验方法与步骤 | 第60-62页 |
4.3.1 标准溶液的配制 | 第60-61页 |
4.3.2 狭缝宽度的选择 | 第61页 |
4.3.3 最大吸收波长的选择 | 第61页 |
4.3.4 标准曲线的绘制 | 第61页 |
4.3.5 样品的预处理 | 第61-62页 |
4.3.6 方法的精密度实验 | 第62页 |
4.3.7 方法回收率实验 | 第62页 |
4.4 实验结果与讨论 | 第62-68页 |
4.4.1 狭缝宽度的选择 | 第62-63页 |
4.4.2 最大吸收波长的选择 | 第63页 |
4.4.3 标准曲线的绘制 | 第63-64页 |
4.4.4 提取条件的选择 | 第64-66页 |
4.4.4.1 分散吸附剂用量的选择 | 第64-65页 |
4.4.4.2 加样量的选择 | 第65-66页 |
4.4.4.3 加水量的选择 | 第66页 |
4.4.5 方法的重复性实验 | 第66-67页 |
4.4.6 方法回收率实验 | 第67-68页 |
4.4.7 样品测定 | 第68页 |
4.5 本章小结 | 第68-69页 |
第5章 结论与展望 | 第69-71页 |
5.1 结论 | 第69-70页 |
5.2 展望 | 第70-71页 |
参考文献 | 第71-81页 |
硕士期间发表的论文 | 第81-82页 |
致谢 | 第82页 |