| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1 前言 | 第10-21页 |
| 1.1 盐胁迫对植物的影响 | 第10-12页 |
| 1.1.1 渗透胁迫 | 第11页 |
| 1.1.2 离子胁迫 | 第11页 |
| 1.1.3 氧化胁迫 | 第11页 |
| 1.1.4 营养胁迫 | 第11-12页 |
| 1.2 植物提高耐盐性的策略 | 第12-13页 |
| 1.2.1 细胞中高的K~+/Na~+比 | 第12页 |
| 1.2.2 渗透调节 | 第12-13页 |
| 1.3 植物耐盐的机制 | 第13-14页 |
| 1.3.1 限制钠离子内流 | 第13页 |
| 1.3.2 钠离子的外排 | 第13页 |
| 1.3.3 钠离子的区域化 | 第13-14页 |
| 1.4 植物耐盐的分子机制研究进展 | 第14-18页 |
| 1.4.1 Na~+/H~+逆向转运蛋白 | 第14-15页 |
| 1.4.2 SOS途径 | 第15-17页 |
| 1.4.3 CBL-CIPK信号途径 | 第17-18页 |
| 1.4.4 H~+-ATPase与Na~+/H~+逆向转运蛋白的关系 | 第18页 |
| 1.5 本研究目的及意义 | 第18-21页 |
| 1.5.1 本实验技术路线 | 第20-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-38页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第21页 |
| 2.1.2 菌株及载体 | 第21页 |
| 2.1.3 酶、生化试剂及试剂盒 | 第21-22页 |
| 2.1.4 主要仪器设备 | 第22页 |
| 2.2 实验方法和步骤 | 第22-38页 |
| 2.2.1 海马齿总RNA的提取 | 第22-23页 |
| 2.2.2 cDNA第一链的合成 | 第23-24页 |
| 2.2.3 植物表达载体构建 | 第24-29页 |
| 2.2.4 SpSOS1蛋白定位 | 第29-31页 |
| 2.2.5 SpSOS1基因在植物中的功能分析 | 第31-36页 |
| 2.2.6 SpAHA1与SpSOS1基因共转拟南介耐盐性分析 | 第36-38页 |
| 3 结果分析 | 第38-58页 |
| 3.1 海马齿RNA提取与cDNA检测 | 第38-39页 |
| 3.2 SpSOS1蛋白的亚细胞定位 | 第39-40页 |
| 3.2.1 海马齿SpSOS1基因克隆及定位载体的构建 | 第39-40页 |
| 3.2.2 海马齿SpSOS1拟南芥原生质体定位 | 第40页 |
| 3.3 转SpSOS1基因拟南芥耐盐性分析 | 第40-51页 |
| 3.3.1 植物表达载体的构建 | 第40-41页 |
| 3.3.2 重组质粒转化农杆菌检测 | 第41-42页 |
| 3.3.3 SpSOS1转基因拟南芥鉴定 | 第42-43页 |
| 3.3.4 盐胁迫下转SpSOS1基因拟南芥相关耐盐基因表达差异 | 第43-45页 |
| 3.3.5 盐胁迫下转SpSOS1基因拟南芥发芽率测定 | 第45-46页 |
| 3.3.6 盐胁迫下转SpSOS1基因拟南芥在MS培养基中表型分析 | 第46-48页 |
| 3.3.7 盐胁迫下转SpSOS1基因拟南芥在土壤中表型分析 | 第48-49页 |
| 3.3.8 盐胁迫下转SpSOS1基因拟南芥的离子含量分析 | 第49-50页 |
| 3.3.9 盐胁迫下转SpSOS1基因拟南芥中各种抗氧化酶活性分析 | 第50-51页 |
| 3.4 SpAHA1对SpSOS1蛋白耐盐性的调节 | 第51-58页 |
| 3.4.1 SpAHA1和SpSOS1双基因表达植物载体构建 | 第51-52页 |
| 3.4.2 重组质粒转化农杆菌检测 | 第52-53页 |
| 3.4.3 盐胁迫下共表达基因SpAHA1、SpSOS1拟南芥在MS培养基中表型分析 | 第53-54页 |
| 3.4.4 盐胁迫下共表达基因SpAHA1、SpSOS1拟南芥在土壤中表型分析 | 第54-55页 |
| 3.4.5 盐胁迫下共表达基因八分SOS/拟南芥在土壤中表型分析 | 第55-58页 |
| 4 讨论 | 第58-62页 |
| 4.1 海马齿SpSOS1蛋白的细胞膜定位 | 第58页 |
| 4.2 海马齿SpSOS1提高植物耐盐性 | 第58-59页 |
| 4.3 海马齿SpAHA1增强SpSOS1的活性进而增加植物耐盐性 | 第59-62页 |
| 5 结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-69页 |
| 附录 | 第69-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
