摘要 | 第7-9页 |
Abstract | 第9-11页 |
缩略词表 | 第12-13页 |
1 前言 | 第13-20页 |
1.1 课题的提出 | 第13页 |
1.2 植物低温响应机制 | 第13-16页 |
1.2.1 低温胁迫诱导植物生理响应 | 第13-15页 |
1.2.2 低温胁迫诱导植物分子响应 | 第15-16页 |
1.3 植物弱光响应机制 | 第16-17页 |
1.4 双重胁迫研究进展 | 第17-19页 |
1.5 研究的目的与意义 | 第19-20页 |
2 材料与方法 | 第20-26页 |
2.1 实验材料 | 第20页 |
2.2 实验方法 | 第20页 |
2.3 西瓜幼苗胁迫处理生理指标测定 | 第20-23页 |
2.3.1 西瓜幼苗冷伤害指标的统计与测定 | 第20-21页 |
2.3.2 西瓜叶片丙二醛(MDA)含量的测定 | 第21页 |
2.3.3 叶绿素荧光相关参数的测定 | 第21页 |
2.3.4 光合作用相关参数的测定 | 第21页 |
2.3.5 相对叶绿素含量的测定 | 第21页 |
2.3.6 H_2O_2组织化学染色 | 第21页 |
2.3.7 H_2O_2含量的测定 | 第21页 |
2.3.8 O_2~-产生速率的测定 | 第21-22页 |
2.3.9 抗坏血酸(AsA、DHA)含量的测定 | 第22页 |
2.3.10 谷胱甘肽(GSH、GSSG)含量的测定 | 第22页 |
2.3.11 可溶性蛋白含量的测定 | 第22页 |
2.3.12 关键抗氧化酶活性的测定 | 第22-23页 |
2.3.13 生理数据分析 | 第23页 |
2.4 转录组数据分析 | 第23-26页 |
2.4.1 叶片总RNA提取及c DNA合成 | 第23-24页 |
2.4.2 RNA质量检测 | 第24页 |
2.4.3 转录组测序 | 第24页 |
2.4.4 转录组数据质量评估及数据处理 | 第24页 |
2.4.5 差异基因分析 | 第24-25页 |
2.4.6 差异表达基因的GO富集分析 | 第25页 |
2.4.7 差异表达基因的Pathway分析 | 第25页 |
2.4.8 qRT-PCR验证 | 第25-26页 |
3 结果与分析 | 第26-56页 |
3.1 生理数据分析 | 第26-36页 |
3.1.1 西瓜幼苗冷伤害指数 | 第26-27页 |
3.1.2 西瓜叶片丙二醛(MDA)含量 | 第27-28页 |
3.1.3 叶绿素荧光参数 | 第28-30页 |
3.1.4 光合作用参数 | 第30页 |
3.1.5 叶绿素含量 | 第30-31页 |
3.1.6 H_2O_2化学组织染色 | 第31-32页 |
3.1.7 H_2O_2含量 | 第32页 |
3.1.8 O_2~-产生速率 | 第32-33页 |
3.1.9 AsA、DHA含量及AsA/DHA | 第33-34页 |
3.1.10 GSH、GSSG含量及GSH/GSSG | 第34-35页 |
3.1.11 关键抗氧化酶活性 | 第35-36页 |
3.2 转录组数据分析 | 第36-44页 |
3.2.1 RNA浓度及质量检测 | 第37-38页 |
3.2.2 转录组数据产出质量 | 第38页 |
3.2.3 HISAT2比对结果 | 第38-39页 |
3.2.4 各转录组数据结果主成分分析及聚类分析 | 第39-40页 |
3.2.5 差异基因分析 | 第40-41页 |
3.2.6 差异表达基因GO富集分析 | 第41-44页 |
3.3 低温、弱光胁迫相互作用的分析 | 第44-56页 |
3.3.1 低温转录组特异性表达基因GO富集及pathway分析 | 第44-45页 |
3.3.2 弱光转录组特异性表达基因GO富集及pathway分析 | 第45-47页 |
3.3.3 低温弱光转录组特异性表达基因GO富集及pathway分析 | 第47-49页 |
3.3.4 三种胁迫转录组共表达基因GO富集及pathway分析 | 第49-51页 |
3.3.5 低温弱光vs低温差异表达基因GO富集及pathway分析 | 第51-52页 |
3.3.6 qRT-PCR验证 | 第52-56页 |
4 讨论 | 第56-60页 |
4.1 低温、弱光及其双重胁迫对西瓜幼苗光合作用的影响 | 第56-57页 |
4.2 低温、弱光及其双重胁迫对ROS积累的影响 | 第57页 |
4.3 低温、弱光及其双重胁迫对关键抗氧化酶活性的影响 | 第57-58页 |
4.4 低温、弱光及其双重胁迫在转录组水平上的相互作用 | 第58-60页 |
5 全文总结 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-72页 |
致谢 | 第72页 |