| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 英文缩略词 | 第10-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-29页 |
| 1.1 HS概述 | 第11-20页 |
| 1.1.1 HS的结构及其合成途径 | 第11-13页 |
| 1.1.2 HS与蛋白之间的相互作用 | 第13-16页 |
| 1.1.3 HS功能 | 第16-19页 |
| 1.1.4 HS结构类似物及其应用 | 第19-20页 |
| 1.2 EPC概述 | 第20-27页 |
| 1.2.1 EPC的来源、特征和分类 | 第21页 |
| 1.2.2 EPC的功能 | 第21-25页 |
| 1.2.3 EPC的应用 | 第25-27页 |
| 1.3 本论文研究思路和内容 | 第27-29页 |
| 1.3.1 立题背景与研究思路 | 第27页 |
| 1.3.2 研究内容 | 第27-29页 |
| 第二章 K5多糖硫酸化衍生物在EPC分化过程中的作用和机制 | 第29-52页 |
| 2.1 引言 | 第29页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第29-31页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第29-30页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第30-31页 |
| 2.3 实验方法 | 第31-37页 |
| 2.3.1 K5多糖的发酵、提取与纯化 | 第31-32页 |
| 2.3.2 K5多糖硫酸化衍生物的制备 | 第32-33页 |
| 2.3.3 K5多糖硫酸化衍生物的表征 | 第33-34页 |
| 2.3.4 K5多糖硫酸化衍生物在EPC分化过程中的影响 | 第34-37页 |
| 2.4 数据分析 | 第37页 |
| 2.5 结果与讨论 | 第37-51页 |
| 2.5.1 K5多糖的发酵、分离提取与纯化 | 第37-38页 |
| 2.5.2 K5多糖硫酸化衍生物的结构表征及性质分析 | 第38-41页 |
| 2.5.3 K5多糖硫酸化衍生物在体外对EPC分化的影响 | 第41-51页 |
| 2.6 本章小结 | 第51-52页 |
| 第三章 K5多糖硫酸化衍生物对EPC细胞性能的影响 | 第52-59页 |
| 3.1 引言 | 第52-53页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第53页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第53页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第53页 |
| 3.3 实验方法 | 第53-54页 |
| 3.3.1 K5多糖硫酸化衍生物的制备 | 第53页 |
| 3.3.2 K5多糖硫酸化衍生物对EPC增殖的影响 | 第53页 |
| 3.3.3 K5多糖硫酸化衍生物对EPC迁移的影响 | 第53-54页 |
| 3.3.4 K5多糖硫酸化衍生物对EPC体外成血管能力的影响 | 第54页 |
| 3.3.5 K5多糖硫酸化衍生物对EPC分泌促血管生成细胞因子的影响 | 第54页 |
| 3.4 数据分析 | 第54页 |
| 3.5 结果与讨论 | 第54-58页 |
| 3.5.1 K5多糖硫酸化衍生物对EPC增殖的影响 | 第54-55页 |
| 3.5.2 K5多糖硫酸化衍生物对EPC迁移的影响 | 第55-56页 |
| 3.5.3 K5多糖硫酸化衍生物对EPC体外成血管能力的影响 | 第56-57页 |
| 3.5.4 K5多糖硫酸化衍生物对EPC分泌促血管生成细胞因子水平的影响 | 第57-58页 |
| 3.6 本章小结 | 第58-59页 |
| 第四章 K5多糖硫酸化衍生物在肿瘤血管形成过程中的活性研究 | 第59-67页 |
| 4.1 引言 | 第59页 |
| 4.2 实验材料与仪器 | 第59-60页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第59页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第59-60页 |
| 4.3 实验方法 | 第60页 |
| 4.3.1 K5多糖硫酸化衍生物的制备 | 第60页 |
| 4.3.2 肿瘤上清液的收集 | 第60页 |
| 4.3.3 肿瘤环境下EPC肿瘤内皮标志物TEM1蛋白表达的变化 | 第60页 |
| 4.3.4 K5多糖硫酸化衍生物对肿瘤模拟环境下EPC细胞生物行为的影响 | 第60页 |
| 4.4 数据分析 | 第60-61页 |
| 4.5 结果与讨论 | 第61-65页 |
| 4.5.1 肿瘤环境下EPC中增殖性能的变化 | 第61页 |
| 4.5.2 肿瘤环境下EPC中TEM1蛋白表达的变化 | 第61-62页 |
| 4.5.3 K5多糖硫酸化衍生物对肿瘤环境下EPC增殖性能的影响 | 第62页 |
| 4.5.4 K5多糖硫酸化衍生物对肿瘤环境下EPC迁移性能的影响 | 第62-64页 |
| 4.5.5 K5多糖硫酸化衍生物对肿瘤环境下EPC促血管形成因子基因表达的影响 | 第64-65页 |
| 4.6 本章小结 | 第65-67页 |
| 第五章 K5多糖硫酸化衍生物干扰肿瘤血管形成的作用机制初探 | 第67-80页 |
| 5.1 引言 | 第67页 |
| 5.2 实验材料与仪器 | 第67-68页 |
| 5.2.1 实验材料与仪器 | 第67-68页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第68页 |
| 5.3 实验方法 | 第68-69页 |
| 5.3.1 K5多糖硫酸化衍生物的制备 | 第68页 |
| 5.3.2 CXCR4在EPC细胞中的表达 | 第68页 |
| 5.3.3 K5多糖硫酸化衍生物对CXCL12刺激环境下EPC细胞生物性能的影响 | 第68页 |
| 5.3.4 K5多糖硫酸化衍生物对CXCL12刺激环境下EPC细胞周期的影响 | 第68页 |
| 5.3.5 Western Blotting法检测EPC相关蛋白的表达 | 第68-69页 |
| 5.3.6 流式细胞术检测EPC细胞CXCR4受体的表达 | 第69页 |
| 5.4 数据分析 | 第69页 |
| 5.5 结果与讨论 | 第69-79页 |
| 5.5.1 CXCR4蛋白在EPC中的表达 | 第69-70页 |
| 5.5.2 CXCL12对EPC增殖的影响 | 第70页 |
| 5.5.3 K5多糖硫酸化衍生物对CXCL12介导的EPC细胞生物性能的影响 | 第70-73页 |
| 5.5.4 K5多糖硫酸化衍生物对CXCL12介导的EPC细胞周期的影响 | 第73-74页 |
| 5.5.5 K5多糖硫酸化衍生物对CXCL12介导的EPC增殖相关蛋白表达的影响 | 第74-75页 |
| 5.5.6 K5多糖硫酸化衍生物对CXCL12/CXCR4信号轴下游信号蛋白的影响 | 第75-76页 |
| 5.5.7 K5多糖硫酸化衍生物对EPC表面CXCR4蛋白内化的影响 | 第76-79页 |
| 5.6 本章小结 | 第79-80页 |
| 主要结论与展望 | 第80-82页 |
| 主要结论 | 第80页 |
| 展望 | 第80-82页 |
| 论文主要创新点 | 第82-83页 |
| 致谢 | 第83-85页 |
| 参考文献 | 第85-95页 |
| 附录: 作者在攻读博士学位期间发表的论文 | 第95页 |
