| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第11-42页 |
| 1.1 纳米材料的基本概念、分类、特性 | 第12-13页 |
| 1.2 金属纳米材料的基本定义、制备简述和经典的结晶控制过程理论 | 第13-16页 |
| 1.2.1 金属纳米材料的基本定义 | 第13页 |
| 1.2.2 金属纳米材料的制备简述、结晶控制过程 | 第13-16页 |
| 1.2.2.1 金属纳米材料的制备简述 | 第13-14页 |
| 1.2.2.2 金属纳米材料的结晶控制过程 | 第14-16页 |
| 1.3 金属纳米材料的光学性质 | 第16-19页 |
| 1.3.1 光学性质 | 第16-17页 |
| 1.3.2 表面等离子共振性质 | 第17-19页 |
| 1.4 几种典型的金属纳米材料 | 第19-29页 |
| 1.4.1 金纳米粒子 | 第19-22页 |
| 1.4.2 金纳米棒 | 第22-25页 |
| 1.4.3 金属纳米团簇 | 第25-29页 |
| 1.5 本论文的主要研究内容和创新之处 | 第29-32页 |
| 参考文献 | 第32-42页 |
| 第二章 基于金纳米棒免标记分析甲基转移酶的活性 | 第42-58页 |
| 2.1 前言 | 第42-43页 |
| 2.2 实验部分 | 第43-46页 |
| 2.2.1 试剂和仪器 | 第43-44页 |
| 2.2.2 试验仪器 | 第44-45页 |
| 2.2.3 Au NRs的制备 | 第45页 |
| 2.2.4 DNA甲基化的检测和Dam MTase活性分析 | 第45页 |
| 2.2.5 实验条件优化 | 第45-46页 |
| 2.2.6 圆二色谱的测定 | 第46页 |
| 2.2.7 抑制剂对DNA甲基转移酶的影响 | 第46页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第46-54页 |
| 2.3.1 检测原理 | 第46-47页 |
| 2.3.2 Au NRs的表征及其稳定性考察 | 第47-48页 |
| 2.3.3 可行性验证 | 第48-49页 |
| 2.3.4 实验原理验证 | 第49-51页 |
| 2.3.5 DNA甲基化检测条件的优化 | 第51-52页 |
| 2.3.6 DNA甲基转移酶的线性分析 | 第52-53页 |
| 2.3.7 DNA甲基转移酶抑制剂的考察 | 第53-54页 |
| 2.4 小结 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-58页 |
| 第三章 基于抗坏血酸为还原剂制备铜纳米簇并应用于NO_2~-的检测 | 第58-88页 |
| 3.1 前言 | 第58-61页 |
| 3.2 实验部分 | 第61-63页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第61页 |
| 3.2.2 仪器 | 第61-62页 |
| 3.2.3 以AA为还原剂制备Cu NCs反应的主要步骤 | 第62页 |
| 3.2.4 基于Cu NCs的荧光猝灭检测NO_2~- | 第62页 |
| 3.2.5 基于Cu NCs的荧光猝灭检测NO_2~-的选择性实验 | 第62-63页 |
| 3.2.6 实际水样中NO_2~-离子的分析 | 第63页 |
| 3.2.7 基于Cu NCs的荧光猝灭检测NO_2~-的纸色谱法 | 第63页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第63-80页 |
| 3.3.1 Cu NCs的形成机理、发光性质相关探讨 | 第63-72页 |
| 3.3.1.1 在30 min内Cu NCs制备液中纳米粒子的主要形貌 | 第63-66页 |
| 3.3.1.2 在30-240 min内Cu NCs反应液中纳米粒子的形貌演变 | 第66-67页 |
| 3.3.1.3 反应时间为180 min和240 min时,样品的TEM和SAED表征 | 第67-68页 |
| 3.3.1.4 Cu NCs形成机理 | 第68-69页 |
| 3.3.1.5 Cu NCs生长过程的光学性质的考察 | 第69-70页 |
| 3.3.1.6 Cu NCs生长过程的UV和FL光谱比较及荧光发光机理解释 | 第70-72页 |
| 3.3.2 以AA为还原剂制备蓝色荧光Cu NCs的表征 | 第72页 |
| 3.3.3 X射线光电子能谱对Cu NCs表征及Cu NCs的稳定性考察 | 第72-73页 |
| 3.3.4 NO_2~-对Cu NCs的荧光猝灭的实验验证 | 第73-74页 |
| 3.3.5 NO_2~-诱导猝灭Cu NCs荧光的机理研究 | 第74-76页 |
| 3.3.6 基于NO_2~-猝灭Cu NCs荧光的选择性实验 | 第76-77页 |
| 3.3.7 利用Cu NCs作为荧光探针检测NO_2~- | 第77-78页 |
| 3.3.8 基于NO_2~-猝灭Cu NCs荧光在实际水样检测中的应用 | 第78-79页 |
| 3.3.9 基于NO_2~-猝灭Cu NCs荧光探索其在检测试纸中的应用 | 第79-80页 |
| 3.4 结论 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-88页 |
| 第四章 基于多巴胺为还原剂制备铜纳米簇用于S~(2-)检测 | 第88-101页 |
| 4.1 前言 | 第88-89页 |
| 4.2 实验部分 | 第89-91页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第89-90页 |
| 4.2.2 仪器 | 第90页 |
| 4.2.3 以DA为还原剂制备Cu NCs反应的主要步骤 | 第90页 |
| 4.2.4 以DA为还原剂生成的Cu NCs检测S~(2-) | 第90页 |
| 4.2.5 实际水样中S2-离子的分析 | 第90-91页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第91-98页 |
| 4.3.1 以DA为还原剂生成绿色荧光Cu NCs的表征 | 第91-93页 |
| 4.3.1.1 荧光激发光谱优化和荧光照片的表征 | 第91-92页 |
| 4.3.1.2 排除DA本身产生的聚合对生成物荧光的影响 | 第92-93页 |
| 4.3.1.3 XPS对生成Cu NCs的表征 | 第93页 |
| 4.3.2 检测S~(2-)离子可行性验证 | 第93-94页 |
| 4.3.3 实验条件的优化 | 第94-95页 |
| 4.3.4 选择性考察 | 第95页 |
| 4.3.5 灵敏性考察 | 第95-96页 |
| 4.3.6 检测S~(2-)离子的荧光猝灭机理研究 | 第96-97页 |
| 4.3.7 基于S~(2-)猝灭Cu NCs荧光在实际水样检测中的应用 | 第97-98页 |
| 4.4 小结 | 第98-99页 |
| 参考文献 | 第99-101页 |
| 第五章 金铜纳米合金簇的制备及其在检测生物硫醇中的应用 | 第101-117页 |
| 5.1 前言 | 第101-103页 |
| 5.2 实验部分 | 第103-104页 |
| 5.2.1 材料与试剂 | 第103页 |
| 5.2.2 仪器 | 第103页 |
| 5.2.3 以SA为还原剂制备AuCu NCs、Cu NCs、Au NCs的主要步骤 | 第103-104页 |
| 5.2.4 以AuCu NCs为荧光探针检测生物硫醇 | 第104页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第104-113页 |
| 5.3.1 以SA为还原剂制备AuCu NCs的表征 | 第104-106页 |
| 5.3.2 以AuCu NCs为荧光探针检测生物硫醇 | 第106-108页 |
| 5.3.3 检测生物硫醇机理的研究 | 第108-112页 |
| 5.3.3.1 分别以Cu NCs和Au NCs为探针检测生物硫醇 | 第108-110页 |
| 5.3.3.2 以AuCu NCs为探针检测生物硫醇的光散射、TEM和AFM表征 | 第110-112页 |
| 5.3.4 选择性考察 | 第112-113页 |
| 5.4 小结 | 第113-114页 |
| 参考文献 | 第114-117页 |
| 第六章 结论与展望 | 第117-120页 |
| 6.1 结论 | 第117-118页 |
| 6.2 展望 | 第118-120页 |
| 致谢 | 第120-121页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第121页 |
