| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 引言 | 第9-10页 |
| 1 文献综述 | 第10-30页 |
| 1.1 神经干细胞 | 第10-12页 |
| 1.1.1 神经干细胞的特性 | 第10-11页 |
| 1.1.2 神经干细胞的培养 | 第11页 |
| 1.1.3 神经干细胞的医学应用 | 第11-12页 |
| 1.2 低温冷冻保存 | 第12-18页 |
| 1.2.1 低温冷冻保存概述 | 第12-13页 |
| 1.2.2 低温冻存过程涉及到的细胞损伤 | 第13-14页 |
| 1.2.3 玻璃化保存 | 第14-16页 |
| 1.2.4 冷冻保护剂和保存液 | 第16-18页 |
| 1.3 相关传质渗透模型和实验研究进展 | 第18-29页 |
| 1.3.1 神经干细胞低温保存实验研究 | 第19-21页 |
| 1.3.2 单细胞跨膜渗透模型 | 第21-23页 |
| 1.3.3 组织传质渗透模型 | 第23-26页 |
| 1.3.4 多组分传质渗透模型 | 第26-29页 |
| 1.4 模拟研究保护剂导入神经干细胞球过程的意义 | 第29页 |
| 1.5 本文研究思路及主要内容 | 第29-30页 |
| 2 多组分CPA导入神经干细胞球的传质模型建立 | 第30-40页 |
| 2.1 概述 | 第30页 |
| 2.2 物理模型 | 第30-31页 |
| 2.3 数学模型 | 第31-33页 |
| 2.3.1 Maxwell-Stefan方程 | 第31-32页 |
| 2.3.2 跨膜渗透模型 | 第32页 |
| 2.3.3 多组分CPA导入神经球传质模型 | 第32-33页 |
| 2.3.4 定解条件 | 第33页 |
| 2.4 数学计算 | 第33-38页 |
| 2.4.1 离散求解 | 第34-36页 |
| 2.4.2 模型参数 | 第36-38页 |
| 2.4.3 程序设计 | 第38页 |
| 2.5 模型验证 | 第38-39页 |
| 2.6 小结 | 第39-40页 |
| 3 CPA对神经干细胞球导入过程的浓度分布模拟 | 第40-67页 |
| 3.1 概述 | 第40页 |
| 3.2 单组分CPA导入神经球的浓度分布模拟 | 第40-50页 |
| 3.2.1 单组分CPA导入神经球浓度变化基本规律 | 第40-43页 |
| 3.2.2 不同操作条件下的单组分CPA导入过程浓度模拟 | 第43-50页 |
| 3.3 多组分CPA导入神经球的浓度分布模拟 | 第50-65页 |
| 3.3.1 多组分CPA导入神经球浓度变化基本规律 | 第50-55页 |
| 3.3.2 不同操作条件下的多组分CPA导入过程浓度模拟 | 第55-65页 |
| 3.4 讨论 | 第65-66页 |
| 3.5 小结 | 第66-67页 |
| 4 CPA对神经干细胞球导入过程的细胞体积变化模拟 | 第67-80页 |
| 4.1 概述 | 第67页 |
| 4.2 单组分CPA导入神经球的细胞体积变化模拟 | 第67-72页 |
| 4.3 多组分CPA导入神经球的细胞体积变化模拟 | 第72-78页 |
| 4.4 讨论 | 第78-79页 |
| 4.5 小结 | 第79-80页 |
| 结论 | 第80-82页 |
| 参考文献 | 第82-88页 |
| 附录A 符号说明 | 第88-90页 |
| 附录B 程序全文 | 第90-93页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第93-94页 |
| 致谢 | 第94-95页 |
