| 中文摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 前言 | 第9-13页 |
| 第一章 多位点效应提高纳米粒跨血脑屏障效率入脑效率的研究 | 第13-29页 |
| 研究目的 | 第13页 |
| 第一节 受体介导转胞吞入脑纳米粒的设计 | 第13-14页 |
| 第二节 纳米粒的合成与表征 | 第14-20页 |
| 1 仪器与材料 | 第14-15页 |
| 1.1 仪器 | 第14-15页 |
| 1.2 材料 | 第15页 |
| 2 合成路线 | 第15-20页 |
| 2.1 参比纳米粒的合成 | 第15-16页 |
| 2.2 目标纳米粒的合成 | 第16-18页 |
| 2.3 参比与目标纳米粒的表征 | 第18-20页 |
| 第三节 目标纳米粒和参比纳米粒活体和离体成像实验 | 第20-28页 |
| 1 仪器与材料 | 第20-21页 |
| 1.1 仪器与动物 | 第20-21页 |
| 1.2 材料 | 第21页 |
| 2 实验部分 | 第21-28页 |
| 2.1 纳米粒的生物分布 | 第21-23页 |
| 2.2 离体脑组织自显影成像 | 第23-24页 |
| 2.3 活体和离体光学成像 | 第24-26页 |
| 2.4 脑组织荧光信号3D重构 | 第26页 |
| 2.5 荧光显微镜成像 | 第26-28页 |
| 本章小结 | 第28-29页 |
| 第二章 纳米激动剂调控血脑屏障通透性实现脑部递药 | 第29-53页 |
| 研究目的 | 第29页 |
| 第一节 纳米激动剂的设计 | 第29-31页 |
| 1. 研究背景 | 第29-30页 |
| 2. 纳米激动剂的组成 | 第30-31页 |
| 第二节 纳米粒的合成与表征 | 第31-37页 |
| 1 仪器与材料 | 第31页 |
| 1.1 仪器 | 第31页 |
| 1.2 材料 | 第31页 |
| 2 合成路线 | 第31-37页 |
| 2.1 小分子激动剂Reg-NH_2的合成 | 第31-34页 |
| 2.2 纳米激动剂与参比纳米粒的合成 | 第34-35页 |
| 2.3 纳米激动剂与参比纳米粒的表征 | 第35-37页 |
| 第二节 模型药物的设计、合成与表征 | 第37-40页 |
| 1. 仪器与材料 | 第37页 |
| 2. 模型药物的设计 | 第37-38页 |
| 3. 合成路线 | 第38-39页 |
| 3.1 纳米影像药物载体材料Dex-NH_2的合成 | 第38-39页 |
| 3.2 荧光成像基团Rho的标记 | 第39页 |
| 3.3 模型药物Dextran-PEG-DTPA的合成 | 第39页 |
| 3.4 模型药物Dex-PEG-~(99m)Tc的合成 | 第39页 |
| 4. 模型药物的Dex-PEG-~(99m)Tc表征 | 第39-40页 |
| 4.1. 模型药物结构确证、粒径分布和Zeta电位测定 | 第39-40页 |
| 4.2. 凝胶渗透色谱法(GPC)测定模型药物的分子量 | 第40页 |
| 第四节 纳米激动剂体外细胞实验 | 第40-45页 |
| 1.仪器与材料 | 第40页 |
| 2 实验部分 | 第40-45页 |
| 2.1 受体竞争抑制实验 | 第40-42页 |
| 2.2 细胞骨架和紧密连接蛋白共聚焦显微镜成像 | 第42-43页 |
| 2.3 血脑屏障模型通透性研究 | 第43-45页 |
| 第五节 纳米激动剂活体与离体影像实验 | 第45-51页 |
| 1 仪器与材料 | 第45页 |
| 2 实验部分 | 第45-51页 |
| 2.1 活体和离体光学成像实验 | 第45-46页 |
| 2.4 活体SPECT/CT成像实验 | 第46-48页 |
| 2.5 共聚焦荧光显微镜成像 | 第48-49页 |
| 2.6 活体γ相机与离体自显影成像 | 第49-51页 |
| 本章小结 | 第51-53页 |
| 全文总结 | 第53-54页 |
| 创新性 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-58页 |
| 附图 | 第58-69页 |
| 综述：跨血脑肿瘤屏障用于脑肿瘤成像的纳米探针 | 第69-78页 |
| 参考文献 | 第75-78页 |
| 在校期间发表论文与专利 | 第78-79页 |
| 在校期间获得奖励 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
