| 摘要 | 第9-11页 |
| ABSTRACT | 第11-13页 |
| 缩略语 | 第14-15页 |
| 引言 | 第15-16页 |
| 第一篇 文献综述 | 第16-44页 |
| 第一章 霉菌毒素的研究进展 | 第16-38页 |
| 1 霉菌毒素的污染现状 | 第16-18页 |
| 2 镰孢霉菌毒素研究进展 | 第18-20页 |
| 2.1 镰孢霉菌毒素概述 | 第18-20页 |
| 2.2 镰孢霉菌毒素对细胞表观修饰的影响 | 第20页 |
| 3 玉米赤霉烯酮的研究进展 | 第20-26页 |
| 3.1 玉米赤霉烯酮的生物学特性 | 第20-21页 |
| 3.2 玉米赤霉烯酮的毒性研究 | 第21-25页 |
| 3.3 玉米赤霉烯酮的毒性机制 | 第25-26页 |
| 4 单端孢霉烯族毒素研究进展 | 第26-38页 |
| 4.1 单端孢霉烯族毒素概述 | 第26-27页 |
| 4.2 T-2毒素和HT-2毒素的研究进展 | 第27-38页 |
| 第二章 卵母细胞质量的判断指标和影响因素 | 第38-44页 |
| 1 卵母细胞质量的形态学标准 | 第38-40页 |
| 1.1 卵丘卵母细胞复合体 | 第38页 |
| 1.2 胞质和极体 | 第38-39页 |
| 1.3 卵周隙和透明带 | 第39页 |
| 1.4 减数分裂纺锤体 | 第39-40页 |
| 1.5 早期胚胎发育能力 | 第40页 |
| 2 细胞骨架与卵母细胞成熟 | 第40-41页 |
| 2.1 微丝与卵母细胞成熟 | 第40页 |
| 2.2 微管与卵母细胞成熟 | 第40-41页 |
| 3 影响卵母细胞质量的因素 | 第41-44页 |
| 3.1 内在因素 | 第41页 |
| 3.2 外在因素 | 第41-44页 |
| 第二篇 试验研究 | 第44-98页 |
| 第三章 HT-2毒素影响小鼠卵母细胞成熟 | 第44-72页 |
| 1 材料与方法 | 第45-58页 |
| 1.1 抗体和试剂 | 第45-47页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第47-48页 |
| 1.3 抗体和试剂的配制 | 第48-51页 |
| 1.4 实验动物 | 第51页 |
| 1.5 小鼠卵母细胞收集和体外培养 | 第51-52页 |
| 1.6 微丝染色方法 | 第52页 |
| 1.7 DNA甲基化免疫荧光检测 | 第52页 |
| 1.8 常规免疫荧光检测 | 第52-53页 |
| 1.9 激光共聚焦观察 | 第53页 |
| 1.10 蛋白免疫印迹(western blot) | 第53-55页 |
| 1.11 小鼠卵母细胞cDNA模版的合成 | 第55-56页 |
| 1.12 实时荧光定量PCR(Quantitative Real Time PCR,qRT-PCR) | 第56-57页 |
| 1.13 统计分析 | 第57-58页 |
| 2 结果 | 第58-69页 |
| 2.1 HT-2毒素对小鼠卵母细胞极体排出率的影响 | 第58-59页 |
| 2.2 HT-2毒素对小鼠卵母细胞细胞骨架的影响 | 第59-61页 |
| 2.3 HT-2毒素诱导小鼠卵母细胞凋亡和自噬 | 第61-63页 |
| 2.4 HT-2毒素诱导小鼠卵母细胞氧化应激 | 第63-64页 |
| 2.5 HT-2毒素对小鼠卵母细胞DNA甲基化水平的影响 | 第64-67页 |
| 2.6 HT-2毒素对小鼠卵母细胞H3K9me2,H3K27me3和H3K4me2水平的影响 | 第67-69页 |
| 3 讨论 | 第69-71页 |
| 4 小结 | 第71-72页 |
| 第四章 玉米赤霉烯酮影响小鼠成熟卵子的表观修饰水平 | 第72-86页 |
| 1 材料与方法 | 第72-74页 |
| 1.1 抗体和试剂 | 第72-73页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第73页 |
| 1.3 抗体和试剂的配制 | 第73页 |
| 1.4 实验动物 | 第73页 |
| 1.5 小鼠卵母细胞收集和体外培养 | 第73-74页 |
| 1.6 孤雌胚胎的获得 | 第74页 |
| 1.7 DNA甲基化免疫荧光检测 | 第74页 |
| 1.8 常规免疫荧光染色 | 第74页 |
| 1.9 激光共聚焦观察 | 第74页 |
| 1.10 小鼠卵子cDNA模版的合成 | 第74页 |
| 1.11 RT-PCR | 第74页 |
| 1.12 统计分析 | 第74页 |
| 2 结果 | 第74-83页 |
| 2.1 玉米赤霉烯酮对小鼠卵子发育能力的影响 | 第74-75页 |
| 2.2 玉米赤霉烯酮对小鼠卵子DNA甲基化水平的影响 | 第75-77页 |
| 2.3 玉米赤霉烯酮对小鼠卵子H3K4me2水平的影响 | 第77-78页 |
| 2.4 玉米赤霉烯酮对小鼠卵子H3K9甲基化水平的影响 | 第78-80页 |
| 2.5 玉米赤霉烯酮对小鼠卵子H4K20甲基化和H3K27甲基化水平的影响 | 第80-83页 |
| 3 讨论 | 第83-84页 |
| 4 小结 | 第84-86页 |
| 第五章 霉菌毒素改变小鼠GV期卵母细胞表观修饰水平 | 第86-98页 |
| 1 材料与方法 | 第87-89页 |
| 1.1 抗体和试剂 | 第87页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第87页 |
| 1.3 抗体和试剂的配制 | 第87页 |
| 1.4 霉变玉米制备 | 第87-88页 |
| 1.5 饲料配制 | 第88页 |
| 1.6 实验动物分组与饲喂 | 第88页 |
| 1.7 小鼠GV期卵母细胞的获取 | 第88页 |
| 1.8 DNA甲基化免疫荧光检测 | 第88-89页 |
| 1.9 常规免疫荧光染色 | 第89页 |
| 1.10 激光共聚焦观察 | 第89页 |
| 1.11 统计分析 | 第89页 |
| 2 结果 | 第89-95页 |
| 2.1 高浓度霉菌毒素对小鼠卵母细胞DNA甲基化水平的影响 | 第89-90页 |
| 2.2 霉菌毒素对小鼠卵子H3K9甲基化水平的影响 | 第90-92页 |
| 2.3 霉菌毒素对小鼠卵母细胞H3K27甲基化水平的影响 | 第92-93页 |
| 2.4 霉菌毒素对小鼠卵母细胞H4K20甲基化水平的影响 | 第93-95页 |
| 3 讨论 | 第95-96页 |
| 4 小结 | 第96-98页 |
| 全文结论 | 第98-100页 |
| 创新性 | 第100-102页 |
| 参考文献 | 第102-120页 |
| 附录1: 博士期间研究成果示意图 | 第120-121页 |
| 附录2: 攻读博士期间发表文章情况 | 第121-124页 |
| 致谢 | 第124页 |
