摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-10页 |
前言 | 第10-12页 |
第一章 文献综述 | 第12-24页 |
·形态学标记 | 第12-14页 |
·细胞学标记 | 第14页 |
·生物化学标记 | 第14-15页 |
·免疫学标记 | 第15-18页 |
·非标记免疫分析方法 | 第15-16页 |
·标记免疫分析技术 | 第16-18页 |
·分子标记 | 第18-24页 |
·限制性片段长度多态性 | 第18-19页 |
·随机扩增片段长度多态性 | 第19页 |
·扩增片段长度多态性 | 第19-20页 |
·微卫星 | 第20-22页 |
·单核苷酸多态性 | 第22-24页 |
第二章 种公牛精液DNA的提取方法的研究 | 第24-31页 |
·材料与方法 | 第24-27页 |
·实验材料 | 第24页 |
·主要实验仪器和设备 | 第24-25页 |
·主要试剂 | 第25页 |
·常用试剂的配制 | 第25-26页 |
·聚丙烯酰胺胶的制备 | 第26页 |
·聚丙烯酰胺凝胶的染色 | 第26-27页 |
·实验方法 | 第27-28页 |
·结果 | 第28-29页 |
·分析与讨论 | 第29-30页 |
·小结 | 第30-31页 |
第三章 Multiple-primer PCR反应体系的构建及验证 | 第31-43页 |
·材料与方法 | 第31-32页 |
·样本配制 | 第31页 |
·主要仪器设备 | 第31页 |
·药品和试剂 | 第31页 |
·PCR引物的来源 | 第31-32页 |
·实验方法 | 第32-34页 |
·引物筛选 | 第32-33页 |
·单引物PCR反应环境的优化 | 第33页 |
·多引物PCR反应条件优化 | 第33-34页 |
·干扰引物的排除 | 第34页 |
·Multiple-primer PCR反应体系的构建 | 第34页 |
·种公牛个体识别方法的验证 | 第34页 |
·结果与分析 | 第34-41页 |
·引物筛选的结果与分析 | 第34-35页 |
·单引物PCR反应环境的优化的结果分析 | 第35-36页 |
·多引物PCR反应条件优化结果 | 第36-37页 |
·干扰引物的排除结果 | 第37-38页 |
·Multiple-PCR构建结果 | 第38-39页 |
·构建结果对个体识别的验证 | 第39-41页 |
·讨论 | 第41-42页 |
·小结 | 第42-43页 |
第四章 结论与创新点 | 第43-44页 |
·结论 | 第43页 |
·创新点 | 第43-44页 |
参考文献 | 第44-48页 |
附录 | 第48-52页 |
致谢 | 第52-53页 |
作者简介 | 第53页 |
研究生期间发表的文章 | 第53-54页 |
导师评阅表 | 第54页 |