| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-11页 |
| 第1章 绪论 | 第11-23页 |
| ·细胞命运转换和植物再生与DNA甲基化 | 第11-13页 |
| ·逆境胁迫与植物基因组DNA甲基化 | 第13-17页 |
| ·生物胁迫 | 第13-14页 |
| ·非生物胁迫 | 第14-16页 |
| ·逆境胁迫造成的甲基化的特点 | 第16-17页 |
| ·植物激素信号与DNA甲基化 | 第17-21页 |
| ·本研究目的与意义 | 第21-23页 |
| 第2章 根和静止中心细胞DNA甲基化胞嘧啶对GABA信号响应的动态变化具有不同的模式 | 第23-36页 |
| ·引言 | 第23-25页 |
| ·实验用品 | 第25-27页 |
| ·实验材料 | 第25页 |
| ·药品试剂与仪器设备 | 第25-27页 |
| ·实验方法 | 第27-29页 |
| ·拟南芥种子处理 | 第27页 |
| ·拟南芥根的愈伤组织诱导培养 | 第27页 |
| ·拟南芥静止中心细胞的分离与纯化 | 第27页 |
| ·DNA甲基化和羟基化的定量检测 | 第27-29页 |
| ·实验结果与分析 | 第29-34页 |
| ·pWOX5-GFP标记静止中心细胞从根愈伤组织中分离和纯化 | 第29-30页 |
| ·根和根愈伤组织(包括静止中心和周围干细胞)及其对GABA信号的响应具有不同的DNA甲基化模式 | 第30-31页 |
| ·根和根愈伤组织(包括静止中心和周围干细胞)及其对GABA信号的响应具有不同的DNA去甲基化模式 | 第31-32页 |
| ·GABA对根和根愈伤组织(包括静止中心和周围干细胞)DNA去甲基化具有不同的模式 | 第32-34页 |
| ·讨论 | 第34-36页 |
| ·拟南芥根和愈伤组织的生长过程中DNA甲基化的变化模式不同 | 第34-35页 |
| ·GABA对拟南芥根和愈伤组织的生长具有相互拮抗的调节模式 | 第35页 |
| ·愈伤组织来源的静止中心和周围干细胞具有不同的甲基化模式和GABA信号响应机制 | 第35-36页 |
| 第3章 极性生长的细胞中DNA胞嘧啶甲基化的动态变化及其对GABA信号的响应 | 第36-48页 |
| ·引言 | 第36-38页 |
| ·实验用品 | 第38页 |
| ·实验材料 | 第38页 |
| ·药品试剂与仪器设备 | 第38页 |
| ·实验方法 | 第38-41页 |
| ·烟草花粉的萌发和培养 | 第38-39页 |
| ·拟南芥的种植和根长的测量 | 第39页 |
| ·基因组DNA的提取与浓度检测 | 第39页 |
| ·DNA甲基化和羟甲基化的定量检测 | 第39页 |
| ·拟南芥根的RNA提取和逆转录 | 第39-40页 |
| ·荧光定量PCR | 第40-41页 |
| ·数据统计和分析 | 第41页 |
| ·实验结果与分析 | 第41-47页 |
| ·1.0 mmol/L GABA能促进烟草花粉管的快速生长 | 第41-42页 |
| ·GABA能降低生长花粉管中DNA的5mC水平和增加5hmC的比例 | 第42-44页 |
| ·1.0 mmol/L GABA对拟南芥对根的生长有显著的促进作用 | 第44-45页 |
| ·1.0 mmol/L GABA能调节PLT1和WOX5的表达 | 第45-46页 |
| ·GABA能降低生长中的拟南芥根的DNA的5mC水平和增加5hmC的比例 | 第46-47页 |
| ·讨论 | 第47-48页 |
| 第4章 总结 | 第48-51页 |
| 参考文献 | 第51-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 附录 攻读学位期间所发表的学术论文、会议摘要 | 第60页 |
