| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-12页 |
| 中英缩略词表 | 第12-13页 |
| 第1章 前言 | 第13-15页 |
| 第2章 体内实验筛选脑卒中后血管新生相关 lncRNAs | 第15-31页 |
| ·实验材料 | 第15-17页 |
| ·主要仪器与设备 | 第15-16页 |
| ·主要试剂及耗材 | 第16页 |
| ·实验动物 | 第16页 |
| ·器材的准备 | 第16-17页 |
| ·主要试剂及配制 | 第17页 |
| ·实验方法 | 第17-25页 |
| ·雄性 SD 大鼠 MCAO 模型的建立及评价 | 第17-19页 |
| ·脑卒中后缺血脑组织 lncRNAs 表达谱的建立 | 第19-24页 |
| ·生物信息学分析筛选脑卒中后血管新生相关 lncRNAs | 第24页 |
| ·动态观察脑卒中后筛选 lncRNAs MEG3 的表达变化 | 第24页 |
| ·统计学分析 | 第24-25页 |
| ·结果 | 第25-31页 |
| ·成功建立 SD 大鼠 MCAO 模型 | 第25页 |
| ·脑卒中后缺血脑组织 lncRNAs 的表达谱变化 | 第25-27页 |
| ·生物信息学分析筛选出与血管新生密切相关的 lncRNAs | 第27-28页 |
| ·脑缺血后 MEG3 的表达下调 | 第28-31页 |
| 第3章 体外研究探讨 MEG3 对血管新生的调控功能 | 第31-60页 |
| ·实验材料 | 第31-33页 |
| ·主要仪器与设备 | 第31-32页 |
| ·主要试剂及耗材 | 第32页 |
| ·实验细胞 | 第32页 |
| ·主要试剂的配制 | 第32-33页 |
| ·实验方法 | 第33-50页 |
| ·细胞的复苏、培养和冻存 | 第33-34页 |
| ·人脐静脉血管内皮细胞（HUVECs）分离培养与鉴定 | 第34-36页 |
| ·HUVECs 缺氧模型的建立与验证 | 第36-40页 |
| ·缺氧对 MEG3 和 VEGFa 表达变化的影响 | 第40-41页 |
| ·pCDH-CMV-MCS-EF-2-puro-MEG3 质粒的构建 | 第41-44页 |
| ·pCDH-MEG3 质粒的验证 | 第44-45页 |
| ·Lentiviral-MEG3 慢病毒的包装、浓缩、滴度测定与验证 | 第45-48页 |
| ·HUVECMEG3 的过表达与鉴定 | 第48页 |
| ·过表达 MEG3 后对 HUVEC 的增殖、迁移和成管的影响 | 第48-50页 |
| ·统计学分析 | 第50页 |
| ·实验结果 | 第50-60页 |
| ·成功分离培养出 HUVECs | 第50-51页 |
| ·成功建立 HUVEC 缺氧模型 | 第51-52页 |
| ·缺氧对 MEG3 与 VEGFa 表达的影响 | 第52页 |
| ·成功构建 pCDH-MEG3 质粒 | 第52-54页 |
| ·成功包装获得 v-meg3 和 v-vector 病毒 | 第54-55页 |
| ·成功过表达 HUVEC 的 MEG343 | 第55-57页 |
| ·MEG3 过表达后抑制 HUVEC 的增殖、迁移和成管能力 | 第57-60页 |
| 第4章 讨论 | 第60-68页 |
| ·脑卒中后的血管新生调控机制 | 第61-62页 |
| ·lncRNAs 与血管新生 | 第62-64页 |
| ·脑卒中后 lncRNAs 的变化及其与血管新生 | 第64-66页 |
| ·脑卒中后 MEG3 血管新生调控功能和机制的初步探讨 | 第66-68页 |
| 第5章 结论 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-75页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第75-76页 |
| 综述 | 第76-85页 |
| 参考文献 | 第83-85页 |
