| Table of Contens | 第1-15页 |
| 摘要 | 第15-19页 |
| ABSTRACT | 第19-24页 |
| 符号说明 | 第24-27页 |
| 第一章 绪论 | 第27-58页 |
| ·碳纳米管简介 | 第27-32页 |
| ·纳米尺度、纳米科学、纳米技术以及纳米材料 | 第27-31页 |
| ·碳纳米管 | 第31-32页 |
| ·碳纳米管的功能化 | 第32-35页 |
| ·共价功能化 | 第32-34页 |
| ·非共价功能化 | 第34-35页 |
| ·碳纳米管潜在的临床应用 | 第35-43页 |
| ·肿瘤治疗 | 第36-40页 |
| ·抗肿瘤化疗 | 第36-38页 |
| ·抗肿瘤免疫治疗 | 第38页 |
| ·抗肿瘤热治疗 | 第38-40页 |
| ·其他肿瘤治疗策略 | 第40页 |
| ·感染性疾病治疗 | 第40-41页 |
| ·中枢神经系统疾病的治疗 | 第41-42页 |
| ·组织工程方面的应用 | 第42页 |
| ·结论 | 第42-43页 |
| ·碳纳米管的生物学活性 | 第43-49页 |
| ·纳米特性引起的生物学活性 | 第44-46页 |
| ·诱导氧化应激 | 第44-45页 |
| ·吸附蛋白 | 第45-46页 |
| ·碳纳米管独特的生物学活性 | 第46-49页 |
| ·石棉样效应 | 第46-47页 |
| ·碳纳米管与细胞信号通路 | 第47页 |
| ·碳纳米管与细胞分化 | 第47-48页 |
| ·碳纳米管与细胞周期 | 第48-49页 |
| ·参考文献 | 第49-58页 |
| 第二章 纳米材料与细胞膜受体相互作用的方法学研究 | 第58-78页 |
| ·引言 | 第58-59页 |
| ·CNT与膜受体相互作用实验模型的构建 | 第59-62页 |
| ·研究CNT-膜受体蛋白相互作用的方法 | 第62-74页 |
| ·原位的邻位连接技术 | 第62-68页 |
| ·实验部分 | 第63-66页 |
| ·结果及讨论 | 第66-68页 |
| ·焚光共振能量转移 | 第68-71页 |
| ·实验部分 | 第70-71页 |
| ·免疫金电镜技术 | 第71-74页 |
| ·实验部分 | 第72-74页 |
| ·结果及讨论 | 第74页 |
| ·结论 | 第74-76页 |
| ·参考文献 | 第76-78页 |
| 第三章 羧基化多壁碳纳米管结合2型BMP受体并抑制BMP信号通路 | 第78-99页 |
| ·引言 | 第78-81页 |
| ·实验部分 | 第81-86页 |
| ·材料与仪器 | 第81-83页 |
| ·实验方法 | 第83-86页 |
| ·细胞转染及荧光素酶活性检测 | 第83-84页 |
| ·原位的邻位连接分析(in situ PLA) | 第84页 |
| ·荧光共振能量转移 | 第84-85页 |
| ·Id1启动子活性检测 | 第85页 |
| ·半定量PCR与实时定量荧光PCR | 第85-86页 |
| ·结果与讨论 | 第86-95页 |
| ·MWCNT-COOH在C2C12细胞中抑制BMP信号通路 | 第86-88页 |
| ·MWCNT-COOH不干扰1型BMP受体caALK2/3诱导的活性 | 第88页 |
| ·MWCNT-COOH抑制BMPR1的磷酸化 | 第88-90页 |
| ·MWCNT-COOH结合于BMPR2并干扰BMPR2/1二聚体形成 | 第90-95页 |
| ·MWCNT-COOH不干扰配体BMP-4与受体的结合 | 第90-91页 |
| ·MWCNT-COOH抑制BMPR2/1异二聚体的形成 | 第91-92页 |
| ·MWCNT-COOH与BMPR2,而不是与BMPR1受体结合 | 第92-95页 |
| ·结论 | 第95-97页 |
| ·参考文献 | 第97-99页 |
| 第四章 羧基化多壁碳纳米管调节bHLH转录因子功能并促进间充质干细胞分化 | 第99-116页 |
| ·引言 | 第99-101页 |
| ·实验部分 | 第101-105页 |
| ·材料与仪器 | 第101-103页 |
| ·实验方法 | 第103-105页 |
| ·免疫细胞化学 | 第103页 |
| ·染色质免疫沉淀(ChIP) | 第103-104页 |
| ·半定量PCR | 第104页 |
| ·启动子活性检测 | 第104页 |
| ·免疫共沉淀 | 第104-105页 |
| ·核融合指数计算 | 第105页 |
| ·统计分析 | 第105页 |
| ·结果与讨论 | 第105-111页 |
| ·MWCNT-COOH调节bHLH蛋白的功能及表达 | 第105-108页 |
| ·MWCNT-COOH促进bHLH二聚体的形成 | 第108页 |
| ·MWCNT-COOH促进bHLH二聚体与E-box的结合 | 第108页 |
| ·MWCNT-COOH增强Myogenin启动子活性 | 第108-110页 |
| ·MWCNT-COOH促进Myogenin的核转移 | 第110页 |
| ·MWCNT-COOH促进C2C12的成肌分化 | 第110-111页 |
| ·结论 | 第111-113页 |
| ·参考文献 | 第113-116页 |
| 第五章 表面修饰的多壁碳纳米管库微调成肌细胞分化 | 第116-133页 |
| ·引言 | 第116-117页 |
| ·实验部分 | 第117-122页 |
| ·材料与仪器 | 第117-118页 |
| ·实验方法 | 第118-122页 |
| ·功能化多壁碳纳米管库的制备 | 第118-120页 |
| ·功能化多壁碳纳米管库对Id1与Myogenin启动子活性的筛选 | 第120-121页 |
| ·功能化多壁碳纳米管对成肌分化影响的分析 | 第121页 |
| ·功能化多壁碳纳米管表面化学与细胞分化效应的构效关系分析 | 第121-122页 |
| ·统计分析 | 第122页 |
| ·结果与讨论 | 第122-130页 |
| ·多壁碳纳米管组合化学库的结构 | 第122-124页 |
| ·多壁碳纳米管组合库Id1启动子活性筛选 | 第124-126页 |
| ·多壁碳纳米管组合库对Myogenin启动子活性筛选 | 第126页 |
| ·表面修饰的多壁碳纳米管组合化学库微调C2C12的成肌分化 | 第126-128页 |
| ·功能化多壁碳纳米管表面化学与细胞分化效应的构效关系分析 | 第128-130页 |
| ·结论 | 第130-131页 |
| ·参考文献 | 第131-133页 |
| 第六章 羧基化多壁碳纳米管抑制细胞凋亡 | 第133-149页 |
| ·引言 | 第133-134页 |
| ·实验部分 | 第134-138页 |
| ·材料及器材 | 第134-135页 |
| ·实验方法 | 第135-138页 |
| ·末端转移酶标记 | 第135页 |
| ·细胞周期分析 | 第135-136页 |
| ·活性氧(ROS)检测 | 第136页 |
| ·免疫细胞化学 | 第136页 |
| ·Caspase-3活性检测 | 第136页 |
| ·统计分析 | 第136-138页 |
| ·结果与讨论 | 第138-145页 |
| ·MWCNT-COOH抑制低血清诱导的细胞凋亡 | 第138页 |
| ·MWCNT-COOH抑制DNA损伤剂诱导的细胞凋亡 | 第138-141页 |
| ·MWCNT-COOH促进p21蛋白的表达及在线粒体上的定位 | 第141-142页 |
| ·MWCNT-COOH抑制Caspase-3活性 | 第142-145页 |
| ·MWCNT-COOH诱导的bHLH蛋白促进p21的表达 | 第145页 |
| ·结论 | 第145-147页 |
| ·参考文献 | 第147-149页 |
| 第七章 羧基化多壁碳纳米管诱导p21介导的细胞周期阻滞 | 第149-168页 |
| ·引言 | 第149-150页 |
| ·实验部分 | 第150-153页 |
| ·材料及器材 | 第150-151页 |
| ·实验方法 | 第151-153页 |
| ·细胞周期分析 | 第151页 |
| ·免疫共沉淀 | 第151-152页 |
| ·半定量PCR | 第152页 |
| ·免疫细胞化学 | 第152页 |
| ·末端转移酶标记(TUNEL) | 第152-153页 |
| ·细胞转染及荧光素酶活性检测 | 第153页 |
| ·统计分析 | 第153页 |
| ·结果与讨论 | 第153-162页 |
| ·MWCNT-COOH的制备与表征 | 第153-154页 |
| ·MWCNT-COOH阻滞细胞周期 | 第154-155页 |
| ·MWCNT-COOH诱导的p21蛋白介导细胞周期阻滞 | 第155-158页 |
| ·MWCNT-COOH上调p21蛋白的mRNA表达 | 第158页 |
| ·MWCNT-COOH不诱导细胞凋亡及p53表达 | 第158-160页 |
| ·MWCNT-COOH诱导非p53依赖的p21表达 | 第160-162页 |
| ·MWCNT-COOH诱导的p21表达依赖E-box序列且受BMP信号通路的控制 | 第162页 |
| ·结论 | 第162-164页 |
| ·参考文献 | 第164-168页 |
| 第八章 总结与展望 | 第168-170页 |
| 第九章 二维盘状纳米材料细胞摄入及细胞毒性的研究 | 第170-186页 |
| ·引言 | 第170页 |
| ·实验部分 | 第170-174页 |
| ·材料及器材 | 第170-171页 |
| ·实验方法 | 第171-174页 |
| ·Nanodisks的合成 | 第171页 |
| ·透射电子显微镜、动态光散射及Zeta电位检测 | 第171-172页 |
| ·激光共聚焦显微镜与流式细胞检测 | 第172页 |
| ·透膜实验 | 第172-173页 |
| ·细胞膜磷脂双分子层的有序性检测 | 第173页 |
| ·活性氧物质(ROS)检测 | 第173页 |
| ·细胞凋亡检测 | 第173-174页 |
| ·细胞周期分析 | 第174页 |
| ·结果与讨论 | 第174-180页 |
| ·Nanodisks与纳米球的单分散 | 第174-176页 |
| ·Nanodisks不进入细胞 | 第176-177页 |
| ·Nanodisks聚集于细胞膜 | 第177-179页 |
| ·Nanodisks不诱导细胞内ROS | 第179页 |
| ·Nanodisks不导致细胞凋亡 | 第179-180页 |
| ·Nanodisks不干扰细胞周期 | 第180页 |
| ·结论 | 第180-182页 |
| ·参考文献 | 第182-186页 |
| 致谢 | 第186-187页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文目录 | 第187-189页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第189页 |
