第一章 文献综述 | 第1-26页 |
·大豆猝死综合症的发生情况 | 第13-16页 |
·大豆猝死综合症的分布 | 第13-14页 |
·大豆猝死综合症的危害状况 | 第14-16页 |
·大豆猝死综合症的经济损失 | 第16页 |
·大豆猝死综合症的研究现状 | 第16-21页 |
·病原生物学 | 第16-18页 |
·病害的发生与发展 | 第18-21页 |
·SDS的致病机制 | 第18页 |
·影响SDS致病性的因素 | 第18-19页 |
·分离与鉴定 | 第19-20页 |
·病害防治 | 第20-21页 |
·大豆猝死综合症病原菌的土壤分离与形态学鉴定 | 第21-23页 |
·土壤分离 | 第21-22页 |
·分离方法 | 第21-22页 |
·培养基 | 第22页 |
·镰刀菌的鉴定 | 第22-23页 |
·菌的生长速度 | 第23页 |
·菌落质地、颜色、菌核 | 第23页 |
·孢子形态特征 | 第23页 |
·有性世代 | 第23页 |
·中国对进口大豆的检疫状况 | 第23-25页 |
·研究的目的和意义 | 第25-26页 |
·研究的目的 | 第25页 |
·研究的意义 | 第25-26页 |
第二章 大豆猝死综合症病原菌的土壤分离 | 第26-34页 |
·材料 | 第26-28页 |
·供试菌株 | 第26-27页 |
·供试土样 | 第27-28页 |
·仪器和试剂 | 第28页 |
·方法 | 第28-29页 |
·培养基的配制 | 第28-29页 |
·SDS病原菌的土壤分离 | 第29页 |
·菌种保存土壤中病原菌的分离 | 第29页 |
·其他参试菌种的分离与培养 | 第29页 |
·各菌株的孢子形态的观察 | 第29页 |
·供试土样中病原菌的分离 | 第29页 |
·结果与分析 | 第29-33页 |
·PCNB上的菌落特征 | 第29-30页 |
·PDA上的菌落特征 | 第30-31页 |
·显微镜下各菌株的孢子形态 | 第31-33页 |
·供试土样的土壤分离结果 | 第33页 |
·讨论 | 第33-34页 |
第三章 大豆猝死综合症病原菌的分子检测 | 第34-45页 |
·材料 | 第34页 |
·供试菌株 | 第34页 |
·仪器和试剂 | 第34页 |
·方法 | 第34-39页 |
·试剂和培养基的配制 | 第34-35页 |
·单孢分离与菌丝培养 | 第35页 |
·真菌菌丝核酸的提取 | 第35页 |
·引物设计 | 第35-37页 |
·真菌ITS区通用引物ITS1/4 | 第36页 |
·SDS病原菌和F.phaseoli的ITS区通用引物Fu1/2 | 第36页 |
·EF-1α基因上ASP的设计 | 第36-37页 |
·ITS2区特异引物的设计 | 第37页 |
·PCR反应 | 第37-38页 |
·PCR反应体系及扩增条件 | 第37页 |
·真菌通用引物ITS 1/4的常规PCR反应 | 第37-38页 |
·Fu1/2的常规PCR反应 | 第38页 |
·AS-PCR反应和引物筛选 | 第38页 |
·Fu1/2和ASP的双重PCR反应及条件优化 | 第38页 |
·特异引物FVS/A的PCR反应 | 第38页 |
·PCR产物电泳分析 | 第38页 |
·PCR产物的克隆和序列测定 | 第38-39页 |
·PCR产物的回收 | 第38-39页 |
·连接 | 第39页 |
·转化 | 第39页 |
·克隆的筛选和测序 | 第39页 |
·疑似菌落的分子检测 | 第39页 |
·结果与分析 | 第39-43页 |
·PCR反应结果 | 第39-43页 |
·真菌通用引物ITS1/4的PCR反应结果 | 第39-40页 |
·引物Fu1/2常规PCR反应的结果 | 第40-41页 |
·AS-PCR反应和引物筛选结果 | 第41-42页 |
·双重PCR反应结果及优化 | 第42-43页 |
·特异引物FVS/A的特异性 | 第43页 |
·测序结果 | 第43页 |
·供试土样中病原菌的分子检测结果 | 第43页 |
·讨论 | 第43-45页 |
第四章 结论和讨论 | 第45-49页 |
·结论 | 第45页 |
·讨论 | 第45-47页 |
·AS-PCR技术的关键 | 第45-46页 |
·AS-PCR反应的条件优化 | 第46-47页 |
·AS-PCR与双重PCR的结合 | 第47页 |
·创新点 | 第47-48页 |
·展望 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-57页 |
致谢 | 第57-58页 |
作者简历 | 第58页 |