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淀粉样前体蛋白(APP)的表达与制备以及非修饰性APP/C99细胞模型的建立与应用

内容提要第1-8页
前言第8-21页
 1. APP 的结构第8-11页
 2. APP 与 AD 关系第11-15页
 3. APP/C99 水解酶—γ-分泌酶第15-17页
 4. APP/C99 水解酶—γ-分泌酶中的活性组分 PS1第17-20页
 5. APP 的原核表达产物研究现状第20-21页
第一章 淀粉样前体蛋白(APP)在大肠杆菌中的表达与纯化第21-45页
 1. 实验材料第21-22页
 2. 实验方法第22-33页
 3. 实验结果第33-43页
   ·目的基因的获得第33-34页
   ·表达载体的构建第34-39页
   ·目的蛋白的表达与纯化第39-41页
   ·表达产物的胰蛋白酶抑制活力第41页
   ·目的蛋白的表达特性鉴定第41-43页
 讨论第43-44页
 小结第44-45页
第二章 非修饰性 APP/C99 细胞模型的建立第45-66页
 1. 实验材料第47-48页
 2. 实验方法第48-52页
 3. 实验结果第52-63页
   ·表达载体 APP770/APP751/APP695/APP695MCC/C99- pcDNA3.1(+) 的构建第52-55页
   ·PC12、HEK293 细胞内源性 APP 水平检测及亚细胞定位第55-56页
   ·APP770/APP751/APP695/APP695MCC/C99-pcDNA3.1 转染靶细胞中外源 APP/C99 的表达与表达部位分析第56-57页
   ·APP770/APP751/APP695/APP695MC/C99 结合的膜片段与 HEK293细胞的融合第57-59页
   ·大肠杆菌表达的 APP770/APP751/APP695/APP695MC/C99 结合的膜片段与 PC12 细胞的融合第59-60页
   ·抗人 Aβ抗体(β-Amyloid(B-4))抗体)对 APP770/APP751/APP695/APP695MC/C99 结合的膜片段与 PC12、HEK293 细胞融合的影响第60-61页
   ·纯化的 APP695 与靶细胞的“融合”第61-62页
   ·APP751 膜成分与 PC12 细胞融合的电镜观察第62-63页
 讨论第63-65页
 小结第65-66页
第三章 非修饰性 APP/C99 细胞模型的初步应用第66-72页
 1. 实验材料第66-67页
 2. 实验方法第67-68页
 3. 实验结果第68-71页
   ·PS1 目的基因的获得及 PS1-pEGFP-C3 重组表达载体的构建第68-69页
   ·分析修饰/非修饰的 C99 在 PC12 及 HEK293 细胞中对 Aβ产生水平的影响第69-71页
 讨论第71页
 小结第71-72页
全文结论第72-73页
参考文献第73-83页
博士期间发表的学术论文第83-84页
中文摘要第84-87页
Abstract第87-90页
致谢第90页

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