| 中文摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-9页 |
| 缩略语表 | 第9-10页 |
| 第1章 绪论 | 第10-30页 |
| ·乳酸菌抗菌肽 | 第10-13页 |
| ·乳酸菌抗菌肽的分类 | 第10-12页 |
| ·乳酸菌抗菌肽的应用 | 第12-13页 |
| ·抗菌肽发酵工艺的研究 | 第13-16页 |
| ·培养基组分对抗菌肽产量的影响 | 第13-14页 |
| ·发酵工艺优化方法-响应面优化法 | 第14-16页 |
| ·抗菌肽产量的影响因素 | 第16页 |
| ·细菌的群体感应 | 第16-25页 |
| ·细菌群体感应现象的提出 | 第17-18页 |
| ·群体感应信号传导系统 | 第18-25页 |
| ·细菌群体感应系统的应用 | 第25页 |
| ·乳酸菌遗传转化体系的研究 | 第25-28页 |
| ·乳酸菌的转化方法 | 第26页 |
| ·乳酸菌电转化的影响因素 | 第26-28页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第28-29页 |
| ·本研究的主要技术路线 | 第29页 |
| ·本课题资助 | 第29-30页 |
| 第2章 材料与方法 | 第30-49页 |
| ·实验材料 | 第30-35页 |
| ·菌种和质粒 | 第30页 |
| ·扩增引物 | 第30-31页 |
| ·培养基 | 第31-32页 |
| ·主要试剂及药品 | 第32-34页 |
| ·试剂盒 | 第34页 |
| ·主要仪器设备 | 第34-35页 |
| ·L.paracasei HD1.7生长曲线与产抗菌肽动态变化过程的研究 | 第35-37页 |
| ·L.paracasei HD1.7生长曲线测定 | 第35-36页 |
| ·L.paracasei HD1.7产抗菌肽动态变化过程 | 第36-37页 |
| ·响应面法优化Paracin1.7发酵条件 | 第37-39页 |
| ·产抗菌肽条件优化单因素试验 | 第37页 |
| ·Plackett-Burman设计 | 第37-38页 |
| ·最陡爬坡试验设计 | 第38页 |
| ·中心组合试验设计 | 第38-39页 |
| ·响应面模型验证 | 第39页 |
| ·副干酪乳杆菌遗传转化体系的建立 | 第39-49页 |
| ·pUC18-prcR-tet质粒的提取及验证 | 第39-41页 |
| ·四环素对L.paracasei HD1.7最小抑制浓度的测定 | 第41-42页 |
| ·L.paracasei HD1.7感受态细胞的制备 | 第42页 |
| ·L.paracasei HD1.7电转化条件的研究 | 第42-44页 |
| ·基因敲除突变株的筛选和鉴定 | 第44-46页 |
| ·菌株的质粒提取及消除 | 第46-48页 |
| ·突变株生长及其发酵液抑菌情况 | 第48-49页 |
| 第3章 结果与分析 | 第49-76页 |
| ·L.paracasei HD1.7产抗菌肽发酵条件优化的前期准备 | 第49-51页 |
| ·L.paracasei HD1.7的生长曲线测定 | 第49-50页 |
| ·L.paracasei HD1.7产抗菌肽动态变化过程的研究 | 第50-51页 |
| ·响应面法优化产抗菌肽发酵条件的研究 | 第51-58页 |
| ·Plackett-Burman设计法筛选显著因子 | 第51-53页 |
| ·最陡爬坡试验 | 第53-54页 |
| ·中心组合设计法确定显著因素的最优水平 | 第54-57页 |
| ·验证试验 | 第57-58页 |
| ·副干酪乳杆菌遗传转化体系的建立 | 第58-74页 |
| ·pUC18-prcR-tet质粒的提取及酶切验证 | 第58-59页 |
| ·四环素对L.paracasei HD1.7的最小抑制浓度 | 第59页 |
| ·L.paracasei HD1.7的电转化 | 第59-64页 |
| ·基因敲除突变株的筛选和鉴定 | 第64-69页 |
| ·菌株的质粒消除结果 | 第69-71页 |
| ·突变株的生长测定 | 第71页 |
| ·突变株发酵液抑菌情况 | 第71-74页 |
| ·总结 | 第74-76页 |
| 第4章 讨论 | 第76-83页 |
| ·抗菌肽发酵工艺的优化 | 第76-77页 |
| ·L.paracasei HD1.7电转化条件的影响因素 | 第77-80页 |
| ·基因敲除突变株的鉴定 | 第80-83页 |
| 第5章 结论 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-92页 |
| 致谢 | 第92-93页 |
