| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 前言 | 第12-20页 |
| 1.1 玉米赤霉烯酮研究进展 | 第12-16页 |
| 1.1.1 ZEA的理化性质 | 第12页 |
| 1.1.2 国内外ZEA的污染现状 | 第12-13页 |
| 1.1.3 ZEA的检测 | 第13-14页 |
| 1.1.4 ZEA的吸收代谢作用 | 第14页 |
| 1.1.5 ZEA毒性作用及其作用机制 | 第14-16页 |
| 1.2 原花青素 | 第16-17页 |
| 1.2.1 原花青素理化性质 | 第16页 |
| 1.2.2 原花青素的生物学活性 | 第16-17页 |
| 1.2.3 原花青素吸收代谢 | 第17页 |
| 1.2.4 原花青素毒理学研究 | 第17页 |
| 1.3 细胞凋亡与内质网应激 | 第17-19页 |
| 1.4 试验目的和意义 | 第19-20页 |
| 第二章 MODE-K细胞培养及建立模型 | 第20-26页 |
| 2.1 试验材料 | 第20-21页 |
| 2.1.1 细胞系 | 第20页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第20页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第20页 |
| 2.1.4 主要试剂的配制 | 第20-21页 |
| 2.2 试验方法 | 第21-22页 |
| 2.2.1 MODE-K细胞的传代培养 | 第21页 |
| 2.2.2 实验模型的建立 | 第21-22页 |
| 2.2.3 统计分析 | 第22页 |
| 2.3 结果分析 | 第22-25页 |
| 2.3.1 ZEA对MODE-K细胞相对成活率的检测结果 | 第22-23页 |
| 2.3.2 PC对小鼠小肠上皮细胞相对存活率的检测结果 | 第23-24页 |
| 2.3.3 ZEA和PC联合培养对MODE-Kcell相对存活率的检测结果 | 第24-25页 |
| 2.4 讨论 | 第25页 |
| 2.5 小结 | 第25-26页 |
| 第三章 原花青素对玉米赤霉烯酮致MODE-K细胞氧化损伤及凋亡的保护研究 | 第26-35页 |
| 3.1 试验材料 | 第26-27页 |
| 3.1.1 主要仪器 | 第26页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第26-27页 |
| 3.2 试验方法 | 第27-28页 |
| 3.2.1 小肠上皮细胞乳酸脱氢酶活性检测 | 第27页 |
| 3.2.2 小肠上皮细胞各种氧化指标检测 | 第27-28页 |
| 3.2.3 FITC Annexin-V/PI流式细胞术对MODE-K细胞凋亡检测 | 第28页 |
| 3.2.4 统计分析 | 第28页 |
| 3.3 结果分析 | 第28-33页 |
| 3.3.1 ZEA和PC联合作用对细胞LDH活性检测结果 | 第28-29页 |
| 3.3.2 小肠上皮细胞氧化指标检测结果 | 第29-31页 |
| 3.3.3 FITC Annexin-V/PI流式双染法检测细胞凋亡结果 | 第31-33页 |
| 3.4 讨论 | 第33-34页 |
| 3.5 小结 | 第34-35页 |
| 第四章 原花青素对玉米赤霉烯酮致MODE-K细胞内质网应激凋亡相关基因和蛋白表达水平影响 | 第35-48页 |
| 4.1 试验材料 | 第35-36页 |
| 4.1.1 主要仪器 | 第35页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第35-36页 |
| 4.1.3 主要试剂配置 | 第36页 |
| 4.2 试验方法 | 第36-41页 |
| 4.2.1 MODE-K细胞内质网氧化应激凋亡相关基因的表达 | 第36-39页 |
| 4.2.2 细胞内质网氧化应激凋亡相关蛋白表达 | 第39-41页 |
| 4.2.3 数据统计与分析 | 第41页 |
| 4.3 结果与分析 | 第41-46页 |
| 4.3.1 MODE-K细胞GRP78/Bip的mRNA和蛋白表达水平 | 第42页 |
| 4.3.2 MODE-K细胞JNK的mRNA和蛋白表达水平 | 第42-43页 |
| 4.3.3 MODE-K细胞Caspase12的mRNA和蛋白表达水平 | 第43-44页 |
| 4.3.4 MODE-K细胞CHOP的mRNA和蛋白表达水平 | 第44页 |
| 4.3.5 MODE-K细胞凋亡蛋白Bax和Bcl-2的蛋白表达水平 | 第44-46页 |
| 4.4 讨论 | 第46-47页 |
| 4.5 小结 | 第47-48页 |
| 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-56页 |
| 附录 | 第56-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 攻读学位期间发表的文章 | 第60-61页 |
