| 内容提要 | 第1-11页 |
| 第1章 绪论 | 第11-37页 |
| 1 研究背景与现状 | 第11-29页 |
| ·半胱氨酸蛋白酶 | 第11-26页 |
| ·半胱氨酸蛋白酶与细胞的自噬和凋亡 | 第11-24页 |
| ·半胱氨酸蛋白酶与癌症 | 第24-25页 |
| ·半胱氨酸蛋白酶抑制剂 | 第25-26页 |
| ·基质金属蛋白酶 | 第26-29页 |
| ·基质金属蛋白酶简介 | 第26-27页 |
| ·基质金属蛋白酶抑制剂 | 第27-28页 |
| ·中药与基质金属蛋白酶 | 第28-29页 |
| 2 研究思路与设计 | 第29-31页 |
| 参考文献 | 第31-37页 |
| 第2章 组织蛋白酶抑制剂的筛选及其对细胞自噬和凋亡的调控作用研究 | 第37-63页 |
| ·材料与方法 | 第37-38页 |
| ·所用试剂和实验材料 | 第37页 |
| ·所用仪器 | 第37-38页 |
| ·实验方法 | 第38-43页 |
| ·组织蛋白酶抑制剂的体外筛选 | 第38页 |
| ·Caspase的体外活性抑制检测 | 第38-39页 |
| ·细胞培养 | 第39页 |
| ·免疫印迹 | 第39-40页 |
| ·免疫细胞化学 | 第40页 |
| ·细胞凋亡的检测 | 第40-41页 |
| ·溶酶体膜通透性(LMP)检测 | 第41页 |
| ·单丹(磺)酰戊二胺(MDC)染色 | 第41页 |
| ·溶酶体红色荧光探针(lysotracker red)标记 | 第41-42页 |
| ·细胞核染色 | 第42-43页 |
| ·实验结果 | 第43-58页 |
| ·组织蛋白酶抑制剂的体外筛选 | 第43页 |
| ·STS能够在体外有效的抑制caspase-3和caspase-8的活性 | 第43-44页 |
| ·STS抑制血清饥饿诱导HT1080细胞发生的自噬和凋亡 | 第44-50页 |
| ·STS抑制血清去除诱导的HT1080细胞溶酶体膜的通透性增加 | 第50-52页 |
| ·STS不能抑制caspase依赖的细胞凋亡 | 第52-53页 |
| ·E-64不能抑制血清去除诱导的细胞凋亡 | 第53-55页 |
| ·E-64d抑制血清去除诱导的自噬并促进凋亡 | 第55-57页 |
| ·PARP的降解与半胱氨酸蛋白酶的相关性 | 第57-58页 |
| ·结论 | 第58-61页 |
| 参考文献 | 第61-63页 |
| 第3章 丹参酮ⅡA磺酸钠抗肿瘤活性研究 | 第63-72页 |
| ·材料与方法 | 第63页 |
| ·所用试剂和实验材料 | 第63页 |
| ·所用仪器 | 第63页 |
| ·实验方法 | 第63-65页 |
| ·时间依赖性抑制的活性测定 | 第63页 |
| ·细胞培养 | 第63-64页 |
| ·细胞活力检测(MTT) | 第64页 |
| ·细胞迁移实验(划痕法) | 第64页 |
| ·细胞侵袭实验 | 第64-65页 |
| ·实验结果 | 第65-69页 |
| ·STS对cathepsin L的抑制是时间依赖的慢结合效应 | 第65页 |
| ·STS对HT1080细胞的活力影响 | 第65-66页 |
| ·STS抑制细胞迁移和侵袭活性 | 第66-69页 |
| ·结论 | 第69-71页 |
| 参考文献 | 第71-72页 |
| 第4章 基质金属蛋白酶抑制剂的筛选和抗肿瘤活性研究 | 第72-81页 |
| ·材料与方法 | 第72页 |
| ·所用试剂和实验材料 | 第72页 |
| ·所用仪器 | 第72页 |
| ·实验方法 | 第72-74页 |
| ·MMPs抑制剂的体外筛选 | 第72-73页 |
| ·细胞培养 | 第73页 |
| ·细胞活力检测(MTT) | 第73页 |
| ·细胞迁移实验 | 第73页 |
| ·细胞三维培养 | 第73-74页 |
| ·实验结果 | 第74-78页 |
| ·焦山栀对MMPs的抑制及对细胞行为的影响 | 第74-75页 |
| ·夜交藤对MMPs的抑制及对细胞行为的影响 | 第75-76页 |
| ·桂枝对MMPs的抑制及对细胞行为的影响 | 第76-78页 |
| ·结论 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-81页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第81-83页 |
| 致谢 | 第83-85页 |
| 中文摘要 | 第85-89页 |
| Abstract | 第89-93页 |
