| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstrct | 第6-11页 |
| 引言 | 第11-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-35页 |
| 1.1 血管抑素研究进展 | 第12-21页 |
| 1.1.1 血管抑素的分子结构 | 第12-14页 |
| 1.1.2 血管抑素抑制肿瘤血管生成的机制 | 第14-18页 |
| 1.1.3 血管抑素抗肿瘤的应用进展 | 第18-21页 |
| 1.1.4 血管抑素应用的局限性 | 第21页 |
| 1.2 姜黄素研究进展 | 第21-33页 |
| 1.2.1 姜黄素抗肿瘤作用机制 | 第23-28页 |
| 1.2.2 姜黄素的临床应用 | 第28-29页 |
| 1.2.3 姜黄素应用的局限性 | 第29-30页 |
| 1.2.4 姜黄素纳米载体 | 第30-33页 |
| 1.3 本论文研究内容及意义 | 第33-35页 |
| 第二章 生物可降解聚合物囊泡共载血管抑素和姜黄素抗血管生成的实验研究 | 第35-53页 |
| 2.1 引言 | 第35-36页 |
| 2.2 实验部分 | 第36-40页 |
| 2.2.1 材料 | 第36页 |
| 2.2.2 仪器 | 第36-37页 |
| 2.2.3 mPEG-PCL的合成 | 第37页 |
| 2.2.4 聚合物囊泡的制备及表征 | 第37页 |
| 2.2.5 临界聚集浓度的测定 | 第37页 |
| 2.2.6 载药囊泡的制备及载药量测定 | 第37-38页 |
| 2.2.7 体外释放测定 | 第38页 |
| 2.2.8 细胞培养 | 第38页 |
| 2.2.9 细胞内药物释放试验 | 第38-39页 |
| 2.2.10 细胞增殖抑制试验 | 第39页 |
| 2.2.11 划痕测定 | 第39页 |
| 2.2.12 鸡胚尿囊膜实验 | 第39-40页 |
| 2.3 实验结果 | 第40-50页 |
| 2.3.1 mPEG-PCL的合成 | 第40页 |
| 2.3.2 空白囊泡的形貌和粒径测定 | 第40-41页 |
| 2.3.3 聚合物囊泡的临界聚集浓度 | 第41-43页 |
| 2.3.4 聚合物囊泡对血管抑素和姜黄素的负载能力 | 第43-44页 |
| 2.3.5 载药囊泡的体外释放研究 | 第44-45页 |
| 2.3.6 MTT | 第45-47页 |
| 2.3.7 载药囊泡的细胞内吞及姜黄素的细胞内释放 | 第47-48页 |
| 2.3.8 划痕实验 | 第48-49页 |
| 2.3.9 囊泡抑制CAM新生血管形成 | 第49-50页 |
| 2.4 讨论 | 第50-53页 |
| 第三章 共载血管抑素和姜黄素PLGA微球的制备及抗肿瘤效果研究 | 第53-69页 |
| 3.1 引言 | 第53-54页 |
| 3.2 实验部分 | 第54-58页 |
| 3.2.1 材料 | 第54页 |
| 3.2.2 仪器 | 第54页 |
| 3.2.3 PLGA微球的制备 | 第54页 |
| 3.2.4 微球形貌和粒径测定 | 第54-55页 |
| 3.2.5 载药量和包封率的测定 | 第55页 |
| 3.2.6 体外释放研究 | 第55页 |
| 3.2.7 增殖抑制实验 | 第55页 |
| 3.2.8 细胞内药物的释放 | 第55-56页 |
| 3.2.9 划痕实验 | 第56页 |
| 3.2.10 Western blotting | 第56-57页 |
| 3.2.11 体内抑瘤实验 | 第57页 |
| 3.2.12 肿瘤组织HE染色 | 第57页 |
| 3.2.13 免疫组化检测肿瘤组织CD31的表达 | 第57-58页 |
| 3.3 实验结果 | 第58-67页 |
| 3.3.1 微球的表征 | 第58-59页 |
| 3.3.2 载药量和体外释放 | 第59页 |
| 3.3.3 MTT实验 | 第59-60页 |
| 3.3.4 细胞摄取实验 | 第60-62页 |
| 3.3.5 划痕实验 | 第62页 |
| 3.3.6 Western blotting结果 | 第62-64页 |
| 3.3.7 体内抑瘤实验结果 | 第64-65页 |
| 3.3.8 肿瘤组织HE染色结果 | 第65页 |
| 3.3.9 肿瘤组织微血管密度测定结果 | 第65-67页 |
| 3.4 讨论 | 第67-69页 |
| 第四章 全文总结 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-82页 |
| 英文缩写词 | 第82-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 在学期间公开发表论文及著作情况 | 第84页 |
