| 缩略语表 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-11页 |
| 英文摘要 | 第11-15页 |
| 前言 | 第16-18页 |
| 文献回顾 | 第18-28页 |
| 一、炎症在ROP中的作用 | 第18-20页 |
| 二、MG参与RNV的生成 | 第20-21页 |
| 三、Caspase-1的分子作用机制及其生物学功能 | 第21-25页 |
| 四、Caspase-1参与RNV生成的可能机制 | 第25-28页 |
| 1 材料 | 第28-30页 |
| 1.1 实验动物 | 第28页 |
| 1.2 试剂 | 第28-29页 |
| 1.3 仪器设备 | 第29-30页 |
| 1.4 细胞来源 | 第30页 |
| 1.5 PCR引物序列 | 第30页 |
| 2 方法 | 第30-35页 |
| 2.1 OIR模型的建立及动物分组 | 第30页 |
| 2.2 小鼠体重的测量 | 第30页 |
| 2.3 视网膜冰冻切片的制作及保存 | 第30-31页 |
| 2.4 冰冻切片免疫荧光染色 | 第31页 |
| 2.5 视网膜铺片制作与血管荧光染色 | 第31页 |
| 2.6 视网膜血管病变观察与定量分析 | 第31-32页 |
| 2.7 细胞培养 | 第32页 |
| 2.8 细胞分组 | 第32页 |
| 2.9 Westernblot检测 | 第32-33页 |
| 2.10 细胞免疫荧光染色 | 第33页 |
| 2.11 RT-PCR检测 | 第33-34页 |
| 2.12 ELISA检测 | 第34页 |
| 2.13 管腔形成实验 | 第34页 |
| 2.14 细胞迁移实验 | 第34-35页 |
| 2.15 统计学分析 | 第35页 |
| 3 结果 | 第35-49页 |
| 3.1 OIR模型的建立 | 第35页 |
| 3.2 OIR小鼠视网膜组织中Caspase-1的表达和活化小胶质细胞的分布 | 第35-38页 |
| 3.3 Caspase-1、IL-1β以及VEGF在OIR模型的蛋白水平变化趋势 | 第38-39页 |
| 3.4 Caspase-1对小鼠生长的影响 | 第39-40页 |
| 3.5 Caspase-1对OIR小鼠视网膜无血管区和新生血管的影响 | 第40页 |
| 3.6 Caspase-1对OIR小鼠视网膜组织中小胶质细胞活化的影响 | 第40-42页 |
| 3.7 Caspase-1对OIR小鼠视网膜组织中相关细胞因子表达的影响 | 第42-43页 |
| 3.8 体外缺氧培养小胶质细胞BV-2中Caspase-1及其活化形式的表达 | 第43-44页 |
| 3.9 小胶质细胞条件培养基对血管内皮细胞RF/6A管腔形成的影响 | 第44-45页 |
| 3.10 小胶质细胞条件培养基对血管内皮细胞RF/6A迁移的影响 | 第45-46页 |
| 3.11 缺氧条件下Caspase-1对培养小胶质细胞活性的影响 | 第46-47页 |
| 3.12 Caspase-1对缺氧条件下小胶质细胞分泌IL-1β的影响 | 第47-48页 |
| 3.13 Caspase-1对缺氧条件下小胶质细胞炎症和血管生成相关细胞因子表达的影响 | 第48-49页 |
| 4 讨论 | 第49-54页 |
| 4.1 炎症是ROP的危险因素 | 第49-50页 |
| 4.2 Caspase-1能够调控小胶质细胞参与OIR | 第50-52页 |
| 4.3 Caspase-1调控小胶质细胞促血管生成的机制探讨 | 第52-54页 |
| 小结 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-63页 |
| 个人简历和研究成果 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
