| 摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第一章 引言 | 第12-18页 |
| 1.1 温度对斑马鱼鳃组织的影响 | 第12-13页 |
| 1.2 Bmp10的研究现状 | 第13-14页 |
| 1.3 Dusp1的研究及其机制 | 第14页 |
| 1.4 引起细胞凋亡的P53信号通路的研究 | 第14-15页 |
| 1.5 TGF-β超家族成员gsdf基因的研究 | 第15-17页 |
| 1.6 研究目的和意义 | 第17-18页 |
| 第二章 低温胁迫下斑马鱼bmp10,dusp1分子调控机制的研究 | 第18-35页 |
| 2.1 前言 | 第18-21页 |
| 2.2 材料与方法 | 第21-27页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第21页 |
| 2.2.2 实验试剂试剂和仪器 | 第21-22页 |
| 2.2.3 相关的抗体和染色试剂盒 | 第22页 |
| 2.2.4 实验方法 | 第22-27页 |
| 2.3 结果与分析 | 第27-32页 |
| 2.3.1 bmp10-/-纯合突变体斑马鱼的表型观察和验证 | 第27-28页 |
| 2.3.2 bmp10-/-纯合突变体斑马鱼在低温环境下P53蛋白水平的表达 | 第28页 |
| 2.3.3 bmp10-/-纯合突变体斑马鱼在低温环境对P53及其靶基因mRNA水平检测 | 第28-31页 |
| 2.3.4 dusp1-/-纯合突变体斑马鱼在低温环境下P38MAPK和ERK蛋白水平的表达 | 第31-32页 |
| 2.4 讨论 | 第32-35页 |
| 第三章 斑马鱼Tg(Crystal-pro-gsdf-2A-egfp)质粒的构建及验证 | 第35-46页 |
| 3.1 前言 | 第35-36页 |
| 3.2 材料和方法 | 第36-39页 |
| 3.2.1 实验方法 | 第36-37页 |
| 3.2.2 实验试剂和仪器 | 第37页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第37-39页 |
| (1)生物信息分析软件 | 第37页 |
| (2)引物设计及合成 | 第37-38页 |
| (3)斑马鱼gsdf基因和2A基因的扩增 | 第38页 |
| (4)Crystal-pro-gsdf-2A-EGFP表达载体的构建 | 第38页 |
| (5)斑马鱼胚胎的显微注射和维持 | 第38-39页 |
| 3.3 结果与分析 | 第39-44页 |
| 3.3.1 斑马鱼gsdf基因和2A肽基因的扩增 | 第39-40页 |
| 3.3.2 重组表达质粒Crystal-pro-gsdf-2A-EGFP的构建 | 第40-41页 |
| 3.3.3 转基因的效率统计结果 | 第41-42页 |
| 3.3.4 转基因斑马鱼系的建立 | 第42-44页 |
| 3.4 讨论 | 第44-46页 |
| 小结 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-57页 |
| 致谢 | 第57页 |
