| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 缩略词表 | 第13-15页 |
| 文献综述 | 第15-45页 |
| 1 植物糖代谢及其与ABA互作关系 | 第15-45页 |
| 1.1 植物体内糖代谢及其生理作用 | 第15-28页 |
| 1.1.1 糖代谢中TCA循环 | 第15-16页 |
| 1.1.2 蔗糖的代谢与运输 | 第16-18页 |
| 1.1.3 乙酰辅酶A的代谢中枢作用 | 第18-21页 |
| 1.1.4 糖代谢的信号转导及其作用 | 第21-28页 |
| 1.2 糖和ABA互作调控植物生长发育 | 第28-34页 |
| 1.2.1 调控种子发育 | 第28-29页 |
| 1.2.2 调控种子萌发 | 第29-31页 |
| 1.2.3 调控根系构型 | 第31-32页 |
| 1.2.4 调控植株生长和衰老 | 第32-34页 |
| 1.3 保卫细胞糖代谢和ABA调控的气孔运动 | 第34-43页 |
| 1.3.1 保卫细胞具有有限的光合作用能力 | 第34-35页 |
| 1.3.2 保卫细胞糖代谢与气孔运动 | 第35-40页 |
| 1.3.3 ABA对保卫细胞代谢水平的影响 | 第40-41页 |
| 1.3.4 气孔近似昼夜节律与糖代谢 | 第41-43页 |
| 1.4 结语：研究目的和意义 | 第43-45页 |
| 研究报告 | 第45-118页 |
| 2 ABA调控拟南芥根系形态建成突变体筛选和相关基因克隆 | 第45-73页 |
| 2.1 前言 | 第45-46页 |
| 2.2 实验材料 | 第46-47页 |
| 2.2.1 植物材料和菌株 | 第46-47页 |
| 2.2.2 转基因质粒载体 | 第47页 |
| 2.2.3 实验试剂 | 第47页 |
| 2.3 实验方法 | 第47-56页 |
| 2.3.1 植物材料的种植 | 第47页 |
| 2.3.2 突变体筛选 | 第47-48页 |
| 2.3.3 根生长指标统计 | 第48-49页 |
| 2.3.4 气孔开度统计 | 第49页 |
| 2.3.5 拟南芥小量基因组DNA提取 | 第49页 |
| 2.3.6 图位克隆 | 第49-52页 |
| 2.3.7 基因表达分析 | 第52-53页 |
| 2.3.8 转基因植物的获得 | 第53-56页 |
| 2.4 结果和分析 | 第56-68页 |
| 2.4.1 ABA反应突变体筛选标准的建立 | 第56-57页 |
| 2.4.2 潜在突变体鉴定和功能初步分析 | 第57-60页 |
| 2.4.3 突变体E8/rsa1-1的表型分析 | 第60-62页 |
| 2.4.4 rsa1-1的遗传学分析 | 第62-63页 |
| 2.4.5 rsa1-1的图位克隆 | 第63-65页 |
| 2.4.6 等位突变体rsa1-2表型分析 | 第65-67页 |
| 2.4.7 rsa1-1/AtRSA1转基因植株回补其被ABA抑制的侧根生长表型 | 第67-68页 |
| 2.5 讨论 | 第68-73页 |
| 2.5.1 ABA调节根系构型形成和发育的遗传学筛选体系 | 第68-71页 |
| 2.5.2 AtRSA1调控植物的侧根生长和气孔反应 | 第71-73页 |
| 3 ATRSA1在ABA调节的侧根和幼苗发育以及气孔运动中的作用 | 第73-83页 |
| 3.1 前言 | 第73页 |
| 3.2 实验材料 | 第73-74页 |
| 3.2.1 植物材料 | 第73页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第73-74页 |
| 3.3 实验方法 | 第74-75页 |
| 3.3.1 萌发率和子叶变绿的统计 | 第74页 |
| 3.3.2 根生长指标的统计 | 第74页 |
| 3.3.3 失水率的计算 | 第74页 |
| 3.3.4 气孔开度的统计 | 第74页 |
| 3.3.5 气孔密度的统计 | 第74页 |
| 3.3.6 远红外成像技术 | 第74-75页 |
| 3.3.7 蜡质观察 | 第75页 |
| 3.4 结果和分析 | 第75-81页 |
| 3.4.1 ABA抑制rsa1-1幼苗形态建成 | 第75-76页 |
| 3.4.2 H_2O_2影响rsa1-1侧根生长 | 第76-77页 |
| 3.4.3 生长素不能恢复rsa1-1侧根生长 | 第77-78页 |
| 3.4.4 rsa1-1气孔反应表型鉴定 | 第78-81页 |
| 3.5 讨论 | 第81-83页 |
| 4 ATRSA1表达及其与ABA关系 | 第83-97页 |
| 4.1 前言 | 第83页 |
| 4.2 实验材料 | 第83-84页 |
| 4.2.1 植物材料和菌株 | 第83页 |
| 4.2.2 转基因质粒载体 | 第83-84页 |
| 4.2.3 实验试剂 | 第84页 |
| 4.3 实验方法 | 第84-89页 |
| 4.3.1 基因亚细胞定位 | 第84-85页 |
| 4.3.2 基因表达分析 | 第85-86页 |
| 4.3.3 基因的组织定位 | 第86-87页 |
| 4.3.4 酵母单杂交方法 | 第87-88页 |
| 4.3.5 基因枪介导的瞬时转化 | 第88-89页 |
| 4.4 结果和分析 | 第89-95页 |
| 4.4.1 AtRSA1定位于过氧化物酶体中 | 第89-90页 |
| 4.4.2 AtRSA1在各组织中表达情况 | 第90-91页 |
| 4.4.3 ABA诱导幼苗中AtRSA1的表达 | 第91-92页 |
| 4.4.4 ABA促进保卫细胞内AtRSA1的表达 | 第92-93页 |
| 4.4.5 AtRSA1启动子区ABRE元件与转录因子ABFs结合 | 第93-94页 |
| 4.4.6 AtRSA1启动子区ABRE元件通过与ABF4结合响应ABA | 第94-95页 |
| 4.5 讨论 | 第95-97页 |
| 5 ATRSA1调节侧根生长和气孔运动的机制 | 第97-117页 |
| 5.1 前言 | 第97-98页 |
| 5.2 实验材料 | 第98页 |
| 5.2.1 植物材料和菌株 | 第98页 |
| 5.2.2 实验试剂 | 第98页 |
| 5.3 实验方法 | 第98-101页 |
| 5.3.1 有机酸含量的测定 | 第98页 |
| 5.3.2 蔗糖含量的测定 | 第98页 |
| 5.3.3 气孔开度的统计 | 第98-99页 |
| 5.3.4 电生理学实验 | 第99页 |
| 5.3.5 保卫细胞pH测定 | 第99-101页 |
| 5.4 结果和分析 | 第101-112页 |
| 5.4.1 AtRSA1的功能缺失降低苹果酸等的积累 | 第101-102页 |
| 5.4.2 rsa1对ABA引起的苹果酸等的含量降低不敏感 | 第102-103页 |
| 5.4.3 ABA抑制acs侧根发育 | 第103-104页 |
| 5.4.4 多种代谢物对rsa1侧根发育的影响 | 第104-105页 |
| 5.4.5 AtRSA1表达影响苹果酸含量和气孔开度 | 第105-106页 |
| 5.4.6 苹果酸恢复rsa1-1气孔开度小的表型 | 第106-108页 |
| 5.4.7 AtRSA1与苹果酸和AtABCB14转运子关系 | 第108-110页 |
| 5.4.8 rsa1-1保卫细胞质膜K~+通道活性降低 | 第110页 |
| 5.4.9 苹果酸恢复rsa1-1的K~+通道活性 | 第110-111页 |
| 5.4.10 AtRSA1影响保卫细胞胞内pH | 第111-112页 |
| 5.5 讨论 | 第112-117页 |
| 5.5.1 AtRSA1参与ABA相关的渗透调节机制 | 第112-113页 |
| 5.5.2 膨压调控的侧根发生和保卫细胞运动 | 第113-115页 |
| 5.5.3 AtRSA1调节侧根发生和气孔开放模型 | 第115-117页 |
| 6 结论 | 第117-118页 |
| 参考文献 | 第118-139页 |
| 致谢 | 第139-140页 |
