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猪β防御素2体外抗金黄色葡萄球菌作用机理的初步研究

致谢第4-8页
摘要第8-10页
英文缩略词表第10-11页
1.文献综述第11-20页
    1.1 抗菌肽的研究进展第11-13页
        1.1.1 抗菌肽的分类第11-12页
        1.1.2 抗菌肽的抗菌作用机制第12-13页
        1.1.3 抗菌肽在畜牧生产中的应用第13页
    1.2 猪β防御素的研究进展第13-15页
        1.2.1 猪β防御素的结构,种类,分布第13-14页
        1.2.2 猪β防御素的抗菌活性第14-15页
        1.2.3 猪β防御素防御素作用机制第15页
    1.3 基因差异表达的研究方法第15-18页
        1.3.1 mRNA差异显示技术(DDRT-PCR)第15-16页
        1.3.2 cDNA代表性差异显示(cDNA-RDA)第16页
        1.3.3 抑制消减杂交第16-17页
        1.3.4 cDNA微阵列第17页
        1.3.5 GeneFishingTMDEGPremixKits第17-18页
    1.4 荧光定量反转录PCR(FQRT-PCR)技术的应用第18-19页
    1.5 研究的目的和意义第19-20页
2.引言第20-21页
3.材料与方法第21-35页
    3.1 实验材料第21-23页
        3.1.1 引物合成、载体和菌种第21页
        3.1.2 酶、试剂盒和其他主要试剂第21页
        3.1.3 主要试剂及配制第21-23页
        3.1.4 主要仪器与设备第23页
    3.2 实验方法第23-35页
        3.2.1 重组工程菌株BL21-pET30a-pBD2的诱导表达第23页
        3.2.2 重组蛋白的提取纯化第23-24页
        3.2.3 蛋白浓度测定第24页
        3.2.4 SDS-PAGE分析第24-25页
        3.2.5 重组蛋白活性分析第25页
        3.2.6 细菌总RNA的提取、纯化及质量检测方法第25-27页
        3.2.7 GeneFishingTM差异显示方法第27-28页
        3.2.8 差异片段回收、克隆、测序方法第28-29页
        3.2.9 差异表达基因序列分析第29页
        3.2.10 荧光定量反转录PCR(FQRT-PCR)的试验方法第29-35页
4.结果与分析第35-49页
    4.1 pBD2的诱导表达与纯化第35页
    4.2 金黄色葡萄球菌与pBD2共培养生长趋势与抑菌活性分析第35-36页
    4.3 总RNA提取、纯化及检测结果第36-37页
    4.4 利用GeneFishingTMRT-PCR得到的差异显示片段结果第37-39页
        4.4.1 GeneFishingTM差异显示RT-PCR电泳结果第37-39页
        4.4.2 表达差异条带的回收、克隆及测序结果第39页
        4.4.3 差异表达片段的数目第39页
    4.5 在Ensembl网站上对表达差异的基因片段进行BLAST搜索结果第39-42页
    4.6 对差异表达基因序列进行分析第42-44页
        4.6.1 与细胞膜合成,运输的相关基因第42页
        4.6.2 与DNA或RNA合成的相关基因第42-43页
        4.6.3 与代谢、蛋白合成相关的基因第43-44页
    4.7 选择最稳定的管家基因第44-45页
        4.7.1 管家基因的检测第44页
        4.7.2 通过GeNorm选择管家基因第44-45页
    4.8 实时荧光定量RT-PCR验证结果第45-49页
        4.8.1 差异表达基因荧光定量数据结果第45-47页
        4.8.2 差异表达基因荧光定量数据作图分析结果第47-49页
5.结论与讨论第49-52页
    5.1 讨论第49-51页
        5.1.1 pBD2的表达、纯化和抑菌第49页
        5.1.2 GeneFishingTMRT-PCR反应第49-50页
        5.1.3 管家基因的选择和实时荧光定量PCR验证差异表达基因第50页
        5.1.4 pBD2抗金黄色葡萄球菌的作用机制第50-51页
    5.2 结论第51-52页
参考文献第52-58页
ABSTRACT第58页
附件第60-63页

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