摘要 | 第4-6页 |
abstract | 第6-8页 |
第1章 绪论 | 第14-50页 |
1.1 肿瘤诊断与治疗应用的纳米载体 | 第15-22页 |
1.1.1 脂质体类纳米载体 | 第15页 |
1.1.2 白蛋白类纳米载体 | 第15-16页 |
1.1.3 多聚物类纳米载体 | 第16页 |
1.1.4 树突状类纳米载体 | 第16-18页 |
1.1.5 水凝胶类纳米载体 | 第18页 |
1.1.6 无机材料类纳米载体 | 第18-20页 |
1.1.7 细胞膜仿生纳米载体 | 第20-22页 |
1.2 基于纳米材料的肿瘤成像 | 第22-29页 |
1.2.1 近红外荧光成像 | 第22-24页 |
1.2.2 磁共振成像 | 第24-25页 |
1.2.3 正电子发射断层扫描成像 | 第25-26页 |
1.2.4 计算机断层扫描成像 | 第26-27页 |
1.2.5 光声成像 | 第27-28页 |
1.2.6 超声成像 | 第28-29页 |
1.3 基于纳米材料的肿瘤治疗 | 第29-36页 |
1.3.1 光热治疗 | 第29-31页 |
1.3.2 光动力治疗 | 第31-32页 |
1.3.3 化学药物治疗 | 第32-33页 |
1.3.4 基因治疗法 | 第33-34页 |
1.3.5 免疫治疗法 | 第34-36页 |
1.4 本文选题与研究内容 | 第36-38页 |
1.5 参考文献 | 第38-50页 |
第2章 900–1000nm区域的近红外荧光成像研究 | 第50-81页 |
2.1 引言 | 第50-51页 |
2.2 材料与方法 | 第51-55页 |
2.2.1 耗材和试剂 | 第51页 |
2.2.2 植物叶片组织和动物肌肉组织匀浆液制备 | 第51页 |
2.2.3 IR-X染料的光学表征 | 第51-52页 |
2.2.4 IR-X染料荧光量子产率的测定 | 第52页 |
2.2.5 NIR-Ia和NIR-1b荧光成像 | 第52页 |
2.2.6 植物叶脉成像 | 第52-53页 |
2.2.7 实验动物饲养和动物操作 | 第53页 |
2.2.8 脑胶质瘤成像 | 第53页 |
2.2.9 淋巴系统成像 | 第53页 |
2.2.10 皮下肿瘤成像 | 第53页 |
2.2.11 影像引导肿瘤切除手术 | 第53-54页 |
2.2.12 评估NIR-1b和NIR-II荧光成像在水介质中穿透能力 | 第54页 |
2.2.13 IR-808的细胞毒性 | 第54页 |
2.2.14 苏木精和伊红染色 | 第54页 |
2.2.15 统计分析 | 第54-55页 |
2.3 实验结果与讨论 | 第55-76页 |
2.3.1 IR-X染料的理化性质研究 | 第55-60页 |
2.3.2 淋巴系统、肿瘤成像和影像引导的肿瘤切除手术 | 第60-64页 |
2.3.3 叶脉成像和植物病害检测 | 第64-65页 |
2.3.4 生物组织和水的自发荧光、散射和光吸收 | 第65-76页 |
2.4 结论 | 第76页 |
2.5 参考文献 | 第76-81页 |
第3章 巨噬细胞膜伪装的纳米颗粒用于脑胶质瘤NIR-Ib荧光成像引导的光热治疗 | 第81-97页 |
3.1 引言 | 第81-82页 |
3.2 材料与方法 | 第82-86页 |
3.2.1 耗材和试剂 | 第82页 |
3.2.2 巨噬细胞膜提取 | 第82页 |
3.2.3 MDINPs制备 | 第82-83页 |
3.2.4 MDINPs表征 | 第83页 |
3.2.5 MDINPs的蛋白质鉴定 | 第83页 |
3.2.6 细胞培养 | 第83-84页 |
3.2.7 细胞摄取 | 第84页 |
3.2.8 MDINPs的细胞毒性测定 | 第84页 |
3.2.9 实验动物饲养和动物操作 | 第84页 |
3.2.10 脑胶质瘤NIR-Ib荧光成像 | 第84-85页 |
3.2.11 NIR-Ib影像引导脑胶质瘤光热治疗 | 第85页 |
3.2.12 HE染色 | 第85页 |
3.2.13 统计分析 | 第85-86页 |
3.3 结果与讨论 | 第86-94页 |
3.3.1 MDINPs的表征 | 第86-90页 |
3.3.2 MDINPs在细胞摄取的研究 | 第90页 |
3.3.3 MDINPs体外光热毒性的评价 | 第90-92页 |
3.3.4 原位脑胶质瘤的NIR-Ib荧光成像 | 第92-93页 |
3.3.5 脑胶质瘤的光热治疗 | 第93-94页 |
3.4 结论 | 第94-95页 |
3.5 参考文献 | 第95-97页 |
第4章 基于NK细胞膜装饰纳米颗粒的PDT增强细胞膜免疫治疗有效抑制原位和异位的肿瘤生长 | 第97-125页 |
4.1 引言 | 第97-98页 |
4.2 材料和方法 | 第98-104页 |
4.2.1 耗材和试剂 | 第98页 |
4.2.2 NK细胞分离 | 第98-99页 |
4.2.3 NK细胞活化和鉴定 | 第99页 |
4.2.4 NK细胞膜提取 | 第99页 |
4.2.5 NK-NPs的制备和表征 | 第99-100页 |
4.2.6 NK-NPs的蛋白质检测 | 第100页 |
4.2.7 NK-NPs的蛋白质组学分析 | 第100页 |
4.2.8 NK-NPs的细胞摄取 | 第100-101页 |
4.2.9 体外细胞毒性和细胞凋亡 | 第101页 |
4.2.10 体外和体内细胞因子检测 | 第101-102页 |
4.2.11 远端肿瘤和脾脏的免疫细胞分析 | 第102页 |
4.2.12 ICD标记物的检测 | 第102-103页 |
4.2.13 M1型和M2型巨噬细胞相关基因表达检测 | 第103页 |
4.2.14 实验动物饲养和动物肿瘤模型 | 第103-104页 |
4.2.15 纳米材料生物分布分析 | 第104页 |
4.2.16 用双侧4T1肿瘤模型研究NK-NPs的抗肿瘤效果和远端效应 | 第104页 |
4.2.17 统计分析 | 第104页 |
4.3 实验结果与讨论 | 第104-121页 |
4.3.1 NK-NPs的制备和表征 | 第104-107页 |
4.3.2 NK细胞膜蛋白成分的表征 | 第107-109页 |
4.3.3 NK-NPs的靶向性研究 | 第109-111页 |
4.3.4 NK-NPs介导的抗肿瘤免疫和引起异端效应 | 第111-116页 |
4.3.5 NK-NPs的抗肿瘤免疫机制:M1型巨噬细胞极化和PDT诱导的免疫原性细胞死亡 | 第116-121页 |
4.4 结论 | 第121页 |
4.5 参考文献 | 第121-125页 |
第5章 构建共载吲哚菁绿和硒的白蛋白纳米颗粒在光热治疗和化疗联合治疗方面的应用 | 第125-144页 |
5.1 引言 | 第125-126页 |
5.2 材料与方法 | 第126-130页 |
5.2.1 耗材和试剂 | 第126页 |
5.2.2 BSINPs的制备 | 第126-127页 |
5.2.3 BSINPs的理化性质表征 | 第127页 |
5.2.4 细胞培养 | 第127页 |
5.2.5 BSINPs的细胞摄取研究 | 第127页 |
5.2.6 体外光热治疗和化疗联合治疗效果的研究 | 第127-128页 |
5.2.7 动物模型 | 第128页 |
5.2.8 生物体纳米材料分布 | 第128页 |
5.2.9 BSINPs的体外和体内光热效应研究 | 第128-129页 |
5.2.10 基于BSINPs的光热治疗和化疗联合治疗研究 | 第129页 |
5.2.11 HE染色 | 第129页 |
5.2.12 统计分析 | 第129-130页 |
5.3 实验结果与讨论 | 第130-140页 |
5.3.1 BSINPs的理化性质表征 | 第130-133页 |
5.3.2 BSINPs的细胞摄取研究 | 第133-135页 |
5.3.3 评估BSINPs体外光热治疗和化疗联合治疗效果 | 第135-136页 |
5.3.4 BSINPs生物分布研究 | 第136-137页 |
5.3.5 BSINPs在动物水平的光热治疗和化疗联合治疗的研究 | 第137-140页 |
5.4 结论 | 第140页 |
5.5 参考文献 | 第140-144页 |
全文总结与展望 | 第144-146页 |
附录 | 第146-148页 |
致谢 | 第148-149页 |
作者简历 | 第149-150页 |
博士期间发表论文目录 | 第150-152页 |
博士期间发表专利目录 | 第152-153页 |
博士期间参与的主要基金项目 | 第153-154页 |
博士期间所获得奖励 | 第154页 |