中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
符号说明 | 第11-13页 |
前言 | 第13-22页 |
研究现状、成果 | 第13-20页 |
研究目的、方法 | 第20-22页 |
一、iNKT细胞通过促进巨噬细胞功能抵抗衣原体呼吸道感染 | 第22-53页 |
1.1 实验材料 | 第22-29页 |
1.1.1 主要仪器和设备 | 第22-23页 |
1.1.2 主要试剂 | 第23-26页 |
1.1.3 主要试剂的配制 | 第26-29页 |
1.1.4 实验菌种 | 第29页 |
1.1.5 实验动物 | 第29页 |
1.2 实验方法 | 第29-38页 |
1.2.1 鼠衣原体的繁殖 | 第29-30页 |
1.2.2 鼠衣原体活性鉴定 | 第30-31页 |
1.2.3 衣原体感染小鼠 | 第31页 |
1.2.4 肺组织上清液中衣原体活性测定 | 第31-32页 |
1.2.5 肺组织病理学染色 | 第32页 |
1.2.6 肺组织单个细胞的制备 | 第32页 |
1.2.7 脾组织单个细胞的制备 | 第32-33页 |
1.2.8 脾、肺单个细胞表面分子染色 | 第33页 |
1.2.9 脾、肺单个细胞细胞内细胞因子染色 | 第33-34页 |
1.2.10 巨噬细胞(F4/80+细胞)的分离纯化 | 第34页 |
1.2.11 肺巨噬细胞的过继转移 | 第34页 |
1.2.12 脾iNKT细胞的分离纯化 | 第34-35页 |
1.2.13 诱导骨髓来源的巨噬细胞(BMMs) | 第35页 |
1.2.14 BMMs和iNKT细胞共培养 | 第35页 |
1.2.15 酶联免疫吸附试验(ELISA)检测细胞因子 | 第35-36页 |
1.2.16 实时定量PCR(real-timePCR)检测肺巨噬细胞信号蛋白 | 第36-37页 |
1.2.17 统计分析 | 第37-38页 |
1.3 结果 | 第38-50页 |
1.3.1 Cm感染小鼠iNKT细胞对肺巨噬细胞扩增和极化的影响 | 第38-43页 |
1.3.2 Cm呼吸道感染中iNKT细胞对肺巨噬细胞及亚群功能的影响 | 第43-46页 |
1.3.3 Cm感染中iNKT细胞影响肺巨噬细胞极化机制 | 第46-48页 |
1.3.4 脾来源iNKT细胞在体外对BMMs的影响 | 第48-50页 |
1.4 讨论 | 第50-52页 |
1.5 小结 | 第52-53页 |
二、Cm-B细胞可分泌IFN-γ抑制OVA诱发的气道过敏反应 | 第53-88页 |
2.1 实验材料 | 第53-59页 |
2.1.1 主要仪器和设备 | 第53-54页 |
2.1.2 主要试剂 | 第54-56页 |
2.1.3 主要试剂的配制 | 第56-59页 |
2.1.4 实验菌种 | 第59页 |
2.1.5 实验动物 | 第59页 |
2.2 实验方法 | 第59-65页 |
2.2.1 鼠衣原体的繁殖 | 第59页 |
2.2.2 鼠衣原体活性鉴定 | 第59页 |
2.2.3 衣原体感染小鼠 | 第59-60页 |
2.2.4 肺组织单个细胞的制备 | 第60页 |
2.2.5 脾组织单个细胞的制备 | 第60页 |
2.2.6 小鼠脾B细胞的分离纯化 | 第60页 |
2.2.7 小鼠过敏模型的构建 | 第60-61页 |
2.2.8 肺组织病理学染色 | 第61页 |
2.2.9 肺泡灌洗液的制备和白细胞分类 | 第61页 |
2.2.10 细胞表面分子染色 | 第61-62页 |
2.2.11 细胞细胞内细胞因子染色 | 第62页 |
2.2.12 染色后流式细胞分析 | 第62-63页 |
2.2.13 细胞刺激和酶联免疫吸附试验(ELISA)检测细胞因子 | 第63-64页 |
2.2.14 血清免疫球蛋白的检测 | 第64页 |
2.2.15 统计分析 | 第64-65页 |
2.3 结果 | 第65-84页 |
2.3.1 Cm感染诱导B细胞活化及分泌IFN-γ | 第65-70页 |
2.3.2 Cm-B对过敏性气道反应的抑制作用 | 第70-77页 |
2.3.3 Cm-B抑制过敏性气道反应的免疫学机制 | 第77-84页 |
2.4 讨论 | 第84-87页 |
2.5 小结 | 第87-88页 |
全文结论 | 第88-90页 |
论文创新点 | 第90-91页 |
参考文献 | 第91-103页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第103-105页 |
综述 病原体感染对哮喘的抑制作用 | 第105-119页 |
综述参考文献 | 第110-119页 |
致谢 | 第119-121页 |
个人简历 | 第121页 |