| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4页 |
| 第一章 前言 | 第8-16页 |
| 1 神经干细胞 | 第8-10页 |
| 1.1 神经干细胞简介 | 第8页 |
| 1.2 哺乳动物大脑中的神经发生 | 第8-9页 |
| 1.3 哺乳动物大脑中NSCs的迁移 | 第9-10页 |
| 2 CD133 | 第10-12页 |
| 2.1 CD133简介 | 第10-11页 |
| 2.2 CD133的表达调控 | 第11页 |
| 2.3 CD133细胞在哺乳动物大脑中的分布 | 第11-12页 |
| 3 组织透明化技术 | 第12-13页 |
| 3.1 组织透明化技术简介 | 第12页 |
| 3.2 组织透明化技术发展 | 第12-13页 |
| 4 三维重建技术 | 第13-14页 |
| 4.1 三维重建技术简介 | 第13-14页 |
| 4.2 基于生物组织学切片的三维重建 | 第14页 |
| 4.3 基于组织透明化技术的三维重建 | 第14页 |
| 5 本论文研究意义 | 第14-16页 |
| 第二章 实验设备与试剂耗材 | 第16-20页 |
| 1 实验设备 | 第16-17页 |
| 2 试剂耗材 | 第17-18页 |
| 3 实验抗体信息 | 第18页 |
| 4 引物信息 | 第18页 |
| 5 实验动物 | 第18-20页 |
| 第三章 实验方法 | 第20-32页 |
| 1 PCR验证小鼠基因型 | 第20-21页 |
| 2 小鼠药物注射 | 第21-22页 |
| 3 小鼠灌注取脑 | 第22-23页 |
| 3.1 小鼠灌注 | 第22-23页 |
| 3.2 小鼠大脑取材 | 第23页 |
| 4 组织透明化 | 第23-27页 |
| 4.1 组织透明化试剂制备 | 第24-25页 |
| 4.1.1 试剂-1（Reagent-1）的制备 | 第24-25页 |
| 4.1.2 试剂-2（Reagent-2）的制备 | 第25页 |
| 4.2 大脑组织透明化步骤 | 第25-27页 |
| 5 大脑片层成像与三维重建 | 第27-29页 |
| 5.1 透明化组织样品成像 | 第27-29页 |
| 5.1.1 样品准备 | 第27页 |
| 5.1.2 仪器准备 | 第27-28页 |
| 5.1.3 仪器参数设置 | 第28页 |
| 5.1.4 成像操作 | 第28-29页 |
| 5.2 大脑片层图像的三维重构 | 第29页 |
| 6 组织学切片 | 第29-30页 |
| 7 免疫染色 | 第30-31页 |
| 8 共聚焦成像 | 第31-32页 |
| 第四章 实验结果 | 第32-57页 |
| 1 小鼠基因型鉴定结果 | 第32-33页 |
| 2 组织透明化实验结果 | 第33-34页 |
| 3 小鼠大脑片层成像结果 | 第34页 |
| 4 小鼠大脑三维重构结果 | 第34-36页 |
| 5 出生后小鼠大脑侧脑室中CD133~+NSCs的神经发生 | 第36-41页 |
| 6 出生后小鼠大脑第三脑室中CD133~+NSCs的神经发生 | 第41-46页 |
| 7 出生后小鼠大脑第四脑室中CD133~+NSCs的神经发生 | 第46-51页 |
| 8 野生型小鼠大脑中CD133~+NSCs的神经发生 | 第51-55页 |
| 9 小鼠大脑三四脑室间CD133~+细胞的迁移 | 第55-57页 |
| 第五章 讨论 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-64页 |
