| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 缩略语表 | 第11-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-23页 |
| 1.1 中国大鲵的生物学研究 | 第13-17页 |
| 1.1.1 大鲵的形态特征 | 第13页 |
| 1.1.2 大鲵的分布 | 第13-14页 |
| 1.1.3 大鲵的生物学习性 | 第14-15页 |
| 1.1.4 大鲵的生物化学研究 | 第15-16页 |
| 1.1.5 大鲵的遗传多样性 | 第16-17页 |
| 1.2 大鲵皮肤的蛋白质组学研究 | 第17-20页 |
| 1.2.1 大鲵皮肤的结构和功能 | 第17页 |
| 1.2.2 蛋白质组学的研究进展 | 第17页 |
| 1.2.3 蛋白质组学的研究方法 | 第17-19页 |
| 1.2.4 两栖动物皮肤的蛋白质组学研究 | 第19-20页 |
| 1.2.5 大鲵皮肤的蛋白质组学研究 | 第20页 |
| 1.3 大鲵饥饿耐受性研究 | 第20-22页 |
| 1.3.1 大鲵饥饿耐受性研究进展 | 第20-21页 |
| 1.3.2 皮肤在耐饥饿中的作用研究 | 第21-22页 |
| 1.4 本论文的研究目的和意义 | 第22-23页 |
| 第二章 材料与方法 | 第23-29页 |
| 2.1 中国大鲵的饲养 | 第23页 |
| 2.2 中国大鲵的禁食处理 | 第23页 |
| 2.3 中国大鲵组织器官的取材 | 第23页 |
| 2.4 蛋白样品制备 | 第23-24页 |
| 2.5 蛋白的定量分析：灰度扫描法 | 第24页 |
| 2.6 双向电泳 | 第24页 |
| 2.7 蛋白质的定性分析 | 第24-26页 |
| 2.7.1 2D/MS法 | 第24-25页 |
| 2.7.2 iTRAQ法 | 第25-26页 |
| 2.8 定量检测数据的整合 | 第26-27页 |
| 2.9 ratio值的算法和意义 | 第27页 |
| 2.10 与生理活动相关蛋白的确认 | 第27页 |
| 2.11 生理活动相关信号通路及其蛋白的确认 | 第27页 |
| 2.12 蛋白表达变化预示的生理活动和信号通路活性分析 | 第27-28页 |
| 2.12.1 IPA分析 | 第27页 |
| 2.12.2 蛋白的协同作用(Ep)分析 | 第27-28页 |
| 2.13 蛋白高通量检测结果中关键蛋白的筛选 | 第28-29页 |
| 第三章 研究结果 | 第29-39页 |
| 3.1 中国大鲵禁食条件下参与皮肤免疫反应的蛋白 | 第29-30页 |
| 3.2 中国大鲵禁食条件下调节皮肤免疫反应信号通路的蛋白 | 第30-32页 |
| 3.3 中国大鲵禁食条件下皮肤免疫反应相关蛋白的表达丰度变化 | 第32-34页 |
| 3.4 中国大鲵禁食条件下皮肤免疫反应相关蛋白表达丰度的ratio值变化 | 第34-36页 |
| 3.5 中国大鲵禁食条件下皮肤免疫反应相关蛋白的表达模式分析 | 第36页 |
| 3.6 中国大鲵禁食条件下皮肤免疫反应相关蛋白表达变化预示的免疫反应活动和调节它们的信号通路活性 | 第36-37页 |
| 3.7 中国大鲵禁食条件下皮肤免疫反应的关键蛋白 | 第37-39页 |
| 第四章 讨论 | 第39-45页 |
| 4.1 中国大鲵禁食条件下皮肤免疫反应相关生理活动的蛋白表达与效应 | 第39-40页 |
| 4.2 中国大鲵禁食条件下皮肤免疫反应相关信号通路的蛋白表达与效应 | 第40-41页 |
| 4.3 中国大鲵禁食条件下皮肤免疫反应的关键蛋白分析 | 第41-45页 |
| 参考文献 | 第45-55页 |
| 结论 | 第55-57页 |
| 附录 A 大鲵皮肤禁食各时间点蛋白表达丰度变化 | 第57-63页 |
| 附录 B 大鲵皮肤禁食各时间点蛋白表达丰度的ratio值变化 | 第63-69页 |
| 致谢 | 第69-71页 |
| 攻读硕士学位期间发表的专利 | 第71-72页 |
