| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略词表 | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-26页 |
| 1.1 有丝分裂的生物学意义 | 第9页 |
| 1.2 减数分裂的生物学意义 | 第9页 |
| 1.3 有丝分裂基本过程 | 第9-10页 |
| 1.4 减数分裂主要过程 | 第10-12页 |
| 1.4.1 减数第一次分裂 | 第10-11页 |
| 1.4.2 减数第二次分裂 | 第11-12页 |
| 1.5 减数分裂前期的重要生物学事件 | 第12页 |
| 1.6 减数分裂的DSB修复模型 | 第12-16页 |
| 1.7 交叉的形成及其意义 | 第16页 |
| 1.8 联会复合体及其形成机制 | 第16-18页 |
| 1.9 减数分裂的重组检验 | 第18-19页 |
| 1.10 DSB双链断裂的其他几种修复机制 | 第19-21页 |
| 1.11 MRN/X复合体 | 第21-25页 |
| 1.12 选题依据 | 第25页 |
| 1.13 研究目标 | 第25-26页 |
| 第二章 材料和方法 | 第26-35页 |
| 2.1 实验材料 | 第26-27页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第26页 |
| 2.1.2 所用质粒与菌株 | 第26页 |
| 2.1.3 酶及各种化学试剂和生物学试剂 | 第26页 |
| 2.1.4 培养基的配置 | 第26-27页 |
| 2.1.5 相关试剂 | 第27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-35页 |
| 2.2.1 水稻DNA小量提取(CTAB法) | 第27页 |
| 2.2.2 水稻总RNA的提取(TRIzol法) | 第27-28页 |
| 2.2.3 mRNA的纯化(试剂盒mRNA Purification kit) | 第28页 |
| 2.2.4 RT(反转)-PCR反应 | 第28-29页 |
| 2.2.5 LD-PCR | 第29页 |
| 2.2.6 Cas9单个中间载体的构建 | 第29-30页 |
| 2.2.7 农杆菌电击转化实验 | 第30页 |
| 2.2.8 酵母转化所需试剂 | 第30页 |
| 2.2.9 相关酵母培养基的配置 | 第30-31页 |
| 2.2.10 酵母感受态的制备 | 第31页 |
| 2.2.11 酵母转化 | 第31-32页 |
| 2.2.12 酵母双杂交检测 | 第32页 |
| 2.2.13 水稻花药cDNA文库的构建 | 第32-33页 |
| 2.2.14 酵母cDNA文库筛选 | 第33页 |
| 2.2.15 显色反应检测阳性克隆 | 第33页 |
| 2.2.16 水稻减数分裂染色体行为观察 | 第33-34页 |
| 2.2.17 染色体蛋白免疫荧光实验 | 第34-35页 |
| 第三章 结果与分析 | 第35-47页 |
| 3.1 OsMRE11基因突变体的获取和鉴定 | 第35-36页 |
| 3.2 OsMRE11基因同源性分析 | 第36-37页 |
| 3.3 Osmre11突变体植株表型的观察和比较 | 第37-39页 |
| 3.4 Osmre11突变体花粉母细胞减数分裂染色体表型观察 | 第39-41页 |
| 3.5 Osmre11中水稻DSB的形成没有受到影响 | 第41-42页 |
| 3.6 OsMRE11基因对DSB的修复和加工有重要影响 | 第42-43页 |
| 3.7 OsMRE11基因的突变会影响水稻减数分裂中交叉结的形成 | 第43页 |
| 3.8 Osmre11突变体会导致同源染色体联会异常 | 第43-44页 |
| 3.9 水稻中MRN复合体之间有相互作用的存在 | 第44-47页 |
| 第四章 讨论 | 第47-49页 |
| 4.1 OsMRE11在水稻的减数分裂中参与了DSB的修复 | 第47页 |
| 4.2 OsMRE11基因对于水稻联会复合体的重要性 | 第47页 |
| 4.3 OsMRE11的部分减数分裂功能与MRN复合体的相关成员没有必然联系 | 第47页 |
| 4.4 OsMRE11基因在水稻中的不同功能的分析 | 第47-49页 |
| 第五章 结论与展望 | 第49-50页 |
| 5.1 结论 | 第49页 |
| 5.2 展望 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-58页 |
| 附录 | 第58-62页 |
| 致谢 | 第62-64页 |
