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RPL32同源核糖体蛋白与ace2上游调控序列相互作用关系的研究

摘要第3-5页
Abstract第5-6页
目录第7-10页
第一章 绪论第10-19页
    一、模式生物酵母的研究背景第10页
    二、ace2等相关基因的研究历史及意义第10-12页
    三、基因转录调控及其转录调控因子的研究第12-17页
        1 基因转录调控第12页
        2 启动子简介第12-13页
        3 转录调控因子简介及其鉴定方法第13-17页
            3.1 酵母单杂交实验以及点圈实验(Spot assay for yeast)的概述第13-15页
            3.2 Chip-PCR技术简介第15-17页
                3.2.1 Chip-PCR的原理和应用前景第15-16页
                3.2.2 Chip-PCR注意点第16-17页
            3.3 凝胶阻滞迁移率(EMSA)简介第17页
    五、本论文的研究目的和主要研究内容第17-19页
第二章 粟酒裂殖酵母中ace2上游启动子序列的确定第19-41页
    第一节 构建含有ace2启动子序列的菌株第19-33页
        1 实验材料与方法第19-28页
            1.1 LB培养基第19页
            1.2 YPDA培养基第19页
            1.3 EMM(Edinburgh minimal medium)培养基第19-20页
            1.4 YES(Yeast Extract with supplements)培养基第20页
            1.5 引物信息第20页
            1.6 仪器设备及主要来源第20页
            1.7 其他试剂第20-21页
            1.8 粟酒裂殖酵母SP-Q01(972)基因组的提取第21页
            1.9 扩增不同大小的ace2上游片段第21-22页
            1.10 割胶回收步骤第22-23页
            1.11 PCR产物的连接反应第23页
            1.12 大肠杆菌感受态的制备第23页
            1.13 TA克隆的构建第23-24页
            1.14 TA克隆验证第24-25页
            1.15 含ace2上游DNA片段的pREP82X+lacZ环形质粒构建第25-26页
            1.16 构建大肠杆菌DH5a(pREP82X+lacZ+x)第26-27页
            1.17 从大肠杆菌克隆中抽提pREP82X+lacZ+x质粒第27-28页
            1.18 克隆菌株yas56(pREP82X+lacZ+x)的构建第28页
            1.19 菌种保藏第28页
        2 实验结果与讨论第28-33页
            2.1 扩增用于酶活性测定菌株的ace2上游片段及RPL3201,RPL3202片段第29页
            2.2 片段连接pMD-18T构建TA克隆第29-30页
            2.3 获取pREP82X+lacZ线性化DNA第30-31页
            2.4 构建裂殖酵母yas56(pREP82X+lacZ+x)第31-33页
    第二节 裂殖酵母yas56半乳糖苷酶酶活性的测定第33-38页
        1 实验材料与方法第33-35页
            1.1 YPDA培养基第33页
            1.2 YES培养基第33页
            1.3 EMM培养基第33-34页
            1.4 主要试剂第34页
            1.5 菌株来源第34页
            1.6 制备粗酶提取物第34-35页
        2 实验结果与讨论第35-38页
            2.1 BSA蛋白标准曲线的制备第36页
            2.2 粟酒裂殖酵母yas56(pREP82X+-lacZ+x)半乳糖苷酶酶活性测定第36-38页
    第三节 生物信息学分析启动子第38-41页
第三章 RPL32同源核糖体蛋白与ace2上游核心启动子相互作用关系的研究第41-63页
    第一节 酵母单杂交法验证RPL32蛋白与ace2上游启动子相互关系的研究第41-55页
        1 实验材料与方法第41-49页
            1.1 试剂第41页
            1.2 LB培养基第41-42页
            1.3 YPDA培养基第42页
            1.4 SD培养基第42页
            1.5 SD-Ura培养基第42页
            1.6 SD-Leu培养基第42页
            1.7 实验引物第42-43页
            1.8 粟酒裂殖酵母SP-Q01基因组的提取第43页
            1.9 抽提pAbAi质粒以及pGADT_7质粒第43-44页
            1.10 扩增酶切位点(HindⅢ/Xho Ⅰ)ace2上游400bp片段第44页
            1.11 PCR扩增带(HindⅢ/XhoⅠ)rp13201、rp13202片段第44页
            1.12 线性化质粒pGADT7、质粒pAbAi第44-45页
            1.13 酶连接反应第45页
            1.14 融合蛋白克隆菌株的构建第45-46页
            1.15 线性化质粒pAbAi第46页
            1.16 诱饵菌株的构建第46-47页
            1.17 诱饵菌株的菌落PCR验证第47页
            1.18 诱饵菌株最低抗生素浓度的确定第47-48页
            1.19 酵母单杂交菌株的合成第48-49页
            1.20 酵母单杂交菌株菌落PCR验证第49页
        2 实验结果与讨论第49-55页
            2.1 酵母单杂交质粒构建第49-50页
            2.2 构建DH5α(pAbAi+400)菌株第50-51页
            2.3 构建诱饵菌株YIHgold(pAbAi+400)第51-52页
            2.4 诱饵菌株抗生素浓度的确定第52-53页
            2.5 点圈实验第53-55页
    第二节 Chip-PCR法验证RPL32蛋白与ace2上游核心启动子相互作用关系的研究第55-63页
        1 实验材料与方法第55-58页
            1.1 实验材料第55-56页
            1.2 细胞体内甲醛交联第56页
            1.3 细胞匀浆液的制备第56-57页
            1.4 纯化免疫共沉淀DNA第57页
            1.5 Chip-PCR检测第57-58页
        2 实验结果与讨论第58-63页
全文总结第63-65页
参考文献第65-69页
致谢第69页

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