| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4-5页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-24页 |
| 1.1 石油脱硫概述 | 第9-11页 |
| 1.1.1 石油的一般性质 | 第9页 |
| 1.1.2 硫在石油中的存在形态 | 第9-10页 |
| 1.1.3 含硫化合物的石油品质及其使用过程的影响 | 第10-11页 |
| 1.1.4 石油脱硫的意义 | 第11页 |
| 1.2 生物脱硫 | 第11-15页 |
| 1.2.1 脱硫微生物 | 第12页 |
| 1.2.2 生物脱硫的代谢途径 | 第12-13页 |
| 1.2.3 生物脱硫工艺研究 | 第13-15页 |
| 1.3 生物脱硫的分子生物学研究 | 第15-17页 |
| 1.3.1 脱硫菌 IGTS8 的几个脱硫相关基因 | 第16页 |
| 1.3.2 分子生物学方法在脱硫基因中的应用 | 第16页 |
| 1.3.3 脱硫基因与在异源菌中的表达 | 第16-17页 |
| 1.4 激光对微生物的变异作用的研究进展 | 第17-19页 |
| 1.4.1 激光对生物体的影响 | 第17-18页 |
| 1.4.2 低功率激光对生物体的影响 | 第18页 |
| 1.4.3 低功率激光诱变及对生物体影响的机理 | 第18-19页 |
| 1.5 固定化细胞在生物脱硫技术中的应用 | 第19-21页 |
| 1.6 固定化细胞的传质和动力学研究 | 第21-23页 |
| 1.7 本课题的研究内容 | 第23-24页 |
| 第二章 菌种的筛选分离，降解能力考察，鉴定及培养条件的优化 | 第24-55页 |
| 2.1 实验材料 | 第24-28页 |
| 2.1.1 主要药品 | 第24-26页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第26-27页 |
| 2.1.3 培养基 | 第27-28页 |
| 2.1.4 本实验所用菌株 | 第28页 |
| 2.2 实验方法 | 第28-36页 |
| 2.2.1 菌种的筛选分离方法 | 第28-31页 |
| 2.2.2 降解能力分析方法 | 第31-32页 |
| 2.2.3 菌种鉴定方法 | 第32-34页 |
| 2.2.4 培养条件的优化 | 第34-36页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第36-54页 |
| 2.3.1 菌种的筛选分离 | 第36-39页 |
| 2.3.2 WQ-01 脱硫能力的考察 | 第39-43页 |
| 2.3.3 WQ-01 菌种的鉴定 | 第43-48页 |
| 2.3.4 培养条件的优化 | 第48-54页 |
| 2.4 本章小结 | 第54-55页 |
| 第三章 激光诱变育种工艺研究及其对脱硫活性的影响 | 第55-98页 |
| 3.1 实验材料 | 第55-59页 |
| 3.1.1 主要药品 | 第55-56页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第56页 |
| 3.1.3 培养基 | 第56-57页 |
| 3.1.4 主要试剂 | 第57-59页 |
| 3.1.5 本实验所用菌株 | 第59页 |
| 3.2 实验方法 | 第59-70页 |
| 3.2.1 激光器的规格描述和激光诱变的流程 | 第59-62页 |
| 3.2.2 脱硫基因测序相关实验方法 | 第62-66页 |
| 3.2.3 脱硫酶活性测定相关实验方法 | 第66-67页 |
| 3.2.4 分析方法：高效液相色谱法测量 DBT 含量 | 第67-70页 |
| 3.2.5 不同反应温度与 pH 值对两种酶活性的影响 | 第70页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第70-97页 |
| 3.3.1 激光诱变工艺参数的影响 | 第70-76页 |
| 3.3.2 正突变株的性能考察 | 第76-79页 |
| 3.3.3 脱硫酶活性的测定 | 第79-88页 |
| 3.3.4 激光诱变对脱硫活性的影响 | 第88-97页 |
| 3.4 本章小结 | 第97-98页 |
| 第四章 固定化静止细胞脱硫特性及模型化研究 | 第98-129页 |
| 4.1 实验材料 | 第98-99页 |
| 4.1.1 主要药品 | 第98页 |
| 4.1.2 主要仪器 | 第98-99页 |
| 4.1.3 培养基 | 第99页 |
| 4.1.4 本实验所用菌株 | 第99页 |
| 4.2 实验方法 | 第99-102页 |
| 4.2.1 菌株的培养，收集以及静止细胞悬浮液的制备 | 第99-100页 |
| 4.2.2 菌株生长曲线测定 | 第100页 |
| 4.2.3 菌株干重与 OD600关系曲线测定 | 第100页 |
| 4.2.4 DBT-O2双底物本征动力学 | 第100-101页 |
| 4.2.5 菌株固定化实验 | 第101-102页 |
| 4.2.6 测定方法 | 第102页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第102-127页 |
| 4.3.1 静止细胞固定化研究 Gordonia sp. WQ-01A 菌种的最佳培养时间 | 第102-103页 |
| 4.3.2 固定化研究 | 第103-110页 |
| 4.3.3 固定化细胞与静止细胞脱硫性能研究 | 第110-115页 |
| 4.3.4 固定化静止细胞脱硫过程的模型化研究 | 第115-127页 |
| 4.4 本章小结 | 第127-129页 |
| 第五章 结论与展望 | 第129-131页 |
| 5.1 结论 | 第129-130页 |
| 5.2 展望 | 第130-131页 |
| 参考文献 | 第131-136页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第136-137页 |
| 附录 | 第137-154页 |
| 致谢 | 第154页 |
