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华绒苞藤抗肿瘤及抗衰老的活性化合物筛选及其机制初探

摘要第6-8页
Abstract第8-10页
缩略词第17-19页
第一章 前言第19-33页
    1.1 衰老与肿瘤第19-24页
        1.1.1 肿瘤发生机制及现状第19-21页
        1.1.2 发生机制及治疗现状第21-23页
        1.1.3 衰老与肿瘤的平衡第23-24页
    1.2 p53在衰老与肿瘤平衡中的作用第24-26页
        1.2.1 p53功能的机制第24-25页
        1.2.2 p53与癌症治疗第25-26页
    1.3 端粒与端粒酶第26-30页
        1.3.1 衰老与端粒酶第28-29页
        1.3.2 癌症与端粒酶第29-30页
    1.4 抗肿瘤药物现状及华绒苞藤简介第30-31页
    1.5 课题研究意义第31-33页
第二章 实验材料第33-41页
    2.1 实验所用细胞系第33页
    2.2 DMEM培养基的配制第33页
    2.3 1640培养基的配制第33-34页
    2.4 细胞冻存液的配制第34页
    2.5 PBS (1X)的配制第34-35页
    2.6 胰酶(0.2%)的配制第35页
    2.7 Western-Blot实验相关试剂配制第35-39页
        2.7.1 细胞蛋白裂解液第35页
        2.7.2 考马斯亮蓝的配制第35-36页
        2.7.3 SDS-PAGE实验各组分的配制第36-37页
        2.7.4 SDS-PAGE Buffer(SDS-free) 10 ×缓冲液第37-38页
        2.7.5 电泳缓冲液第38页
        2.7.6 转膜液第38页
        2.7.7 洗膜液第38页
        2.7.8 封闭液第38-39页
    2.8 青霉素-链霉素储备液(Penicillin-Streptomycin):1000×第39页
    2.9 10%三氯乙酸(TCA)第39页
    2.10 磺酰罗丹明B溶液(SRB):0.057%第39-40页
    2.11 乙酸1%第40页
    2.12 10mMTris base solution buffer第40-41页
第三章 实验方法第41-59页
    3.1 细胞相关实验第41-45页
        3.1.1 细胞复苏第41-42页
        3.1.2 细胞传代第42-43页
        3.1.3 细胞冻存第43-45页
    3.2 SRB检测药物杀伤性第45-47页
    3.3 实时荧光定量核酸扩增检测Real-time Quantitative PCR Detecting第47-51页
        3.3.1 细胞总RNA的提取第48页
        3.3.2 RNA浓度测定第48-49页
        3.3.3 逆转录过程第49-50页
        3.3.4 Real-time PCR第50-51页
    3.4 蛋白免疫印迹(western blot)第51-55页
        3.4.1 目的细胞总蛋白的提取第51-52页
        3.4.2 蛋白定量第52页
        3.4.3 凝胶配制第52-53页
        3.4.4 上样体系配制第53-54页
        3.4.5 凝胶电泳第54页
        3.4.6 转膜第54-55页
        3.4.7 封闭第55页
        3.4.8 抗孵育第55页
        3.4.9 二抗孵育第55页
        3.4.10 显影第55页
    3.5 流式细胞仪检测细胞凋亡第55-57页
    3.6 荧光检测相应基因激活第57-59页
第四章 结果与讨论第59-77页
    4.1 关于华绒苞藤粗提物的相关检测及验证第59-62页
        4.1.1 华绒苞藤粗提物的p53激活情况第59-60页
        4.1.2 七种药用植物粗提物对于肿瘤细胞及WT-MEF细胞增殖水平的影响第60页
        4.1.3 华绒苞藤粗提物对于肿瘤细胞TERT表达水平的影响第60-61页
        4.1.4 华绒苞藤粗提物对A549细胞中p53蛋白表达的影响第61-62页
    4.2 华绒苞藤粗提物分层活性部位的检测与筛选第62-64页
        4.2.1 华绒苞藤粗提物分层活性部位对于肿瘤细胞及WT-MEF细胞的增殖水平影响第62-63页
        4.2.2 华绒苞藤粗提物分层活性部位对于A549细胞TERT表达水平的影响第63-64页
    4.3 水层成分的分层活性部位的检测与筛选第64-66页
        4.3.1 水层成分的分层活性部位对于肿瘤细胞及正常细胞的增殖水平的影响第64-65页
        4.3.2 D-4及D-5活性部位对于A549、HT29细胞TERT表达水平的影响第65-66页
    4.4 D-4、D-5成分分层活性部位的检测与筛选第66-68页
        4.4.1 D-4、D-5成分分层活性部位对肿瘤细胞及WT-MEF细胞的增殖水平的影响第66-67页
        4.4.2 1沉2对于A549细胞TERT表达水平的影响第67-68页
    4.5 E组活性部位的检测与筛选第68-71页
        4.5.1 沉1、沉2活性成分分层活性部位对肿瘤细胞及WT-MEF细胞增殖水平的影响第68-69页
        4.5.2 E-7活性成分处理后对A549细胞中TERT表达水平的影响第69页
        4.5.3 E-7对A549细胞中p53蛋白的表达影响第69-70页
        4.5.4 E-7对荧光细胞的p53激活情况第70页
        4.5.5 E-7对A549细胞凋亡的影响第70-71页
    4.6 Fr-5-3组分活性检测第71-72页
        4.6.1 Fr-5-3对肿瘤细胞A549及WT-MEF细胞增殖水平的影响第71-72页
        4.6.2 FR-5-3的成分检测情况第72页
    4.7 华绒苞藤重新分离组分的检测与筛选第72-74页
        4.7.1 华绒苞藤重新分离活性部位对于肿瘤细胞及WT-MEF细胞增殖水平的影响第73-74页
    4.8 G2,G3,G4,G5,G6,G7活性成分的混合物G2-7的检测第74-77页
        4.8.1 G2-7对肿瘤细胞及WT-MEF细胞增殖水平的影响第75页
        4.8.2 G2-7对于肿瘤细胞A549中TERT表达水平的影响第75-76页
        4.8.3 G2-7对肿瘤细胞A549中p53蛋白的表达情况影响第76-77页
第五章 总结与展望第77-80页
    5.1 总结第77-78页
    5.2 展望第78-80页
致谢第80-83页
参考文献第83-93页
附录 攻读硕士期间发表论文目录第93页

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