摘要 | 第8-10页 |
英文摘要 | 第10-12页 |
1 前言 | 第13-23页 |
1.1 鸽源禽Ⅰ型副粘病毒简介 | 第13-14页 |
1.2 先天性免疫系统介绍 | 第14-15页 |
1.3 Toll受体介导的信号转导 | 第15-16页 |
1.3.1 Toll受体概述 | 第15页 |
1.3.2 Toll受体对病菌及病毒的识别 | 第15-16页 |
1.3.3 Toll受体介导的信号转导 | 第16页 |
1.4 RIG-I样受体介导的信号转导 | 第16-17页 |
1.4.1 RLRs结构与功能 | 第16页 |
1.4.2 RLRs对病毒的识别 | 第16-17页 |
1.4.3 RLRs介导的信号转导 | 第17页 |
1.5 禽β-防御素(Avian β-defensins, AvBDs)的研究进展 | 第17-18页 |
1.5.1 AvBDs的概述 | 第17页 |
1.5.2 AvBDs的生物学活性 | 第17-18页 |
1.6 细胞因子的概述 | 第18-21页 |
1.6.1 白细胞介素(IL) | 第19-20页 |
1.6.2 干扰素(IFN) | 第20页 |
1.6.3 转化生长因子-β(TGF-β) | 第20-21页 |
1.7 细胞凋亡机制 | 第21页 |
1.8 研究的目的与意义 | 第21-23页 |
2 材料和方法 | 第23-32页 |
2.1 材料 | 第23-24页 |
2.1.1 试验动物 | 第23页 |
2.1.2 病毒 | 第23页 |
2.1.3 主要试剂及配制 | 第23-24页 |
2.1.4 主要仪器 | 第24页 |
2.2. PPMV-1 感染鸽子后抗体水平的检测 | 第24-25页 |
2.2.1 病毒毒力(embryo infectious doses,EID_(50))的测定 | 第24页 |
2.2.2 人工感染试验 | 第24-25页 |
2.2.3 抗体检测方法 | 第25页 |
2.3 经PPMV-1 感染后,鸽TLRs、RLRs、AvBDs及细胞因子、信号转导相关分子、凋亡基因的组织表达差异 | 第25-31页 |
2.3.1 样品处理及RNA提取 | 第25-26页 |
2.3.2 荧光定量PCR引物设计 | 第26-28页 |
2.3.3 荧光定量标准品制备 | 第28-31页 |
2.3.4 鸽TLRs、RLRs、AvBDs、细胞因子、信号转导相关分子、凋亡基因的组织表达差异以及病毒载量的检测 | 第31页 |
2.4 数据统计分析 | 第31-32页 |
3 结果与分析 | 第32-54页 |
3.1 鸡胚半数感染量(EID_(50))的测定结果 | 第32页 |
3.2 人工感染试验结果 | 第32-36页 |
3.2.1 PPMV-1 感染鸽子后抗体变化 | 第32-33页 |
3.2.2 PPMV-1 感染鸽子后的临床表现症状 | 第33-34页 |
3.2.3 PPMV-1 感染鸽子后病变组织病理变化 | 第34-36页 |
3.3 感染PPMV-1 后,鸽体内组织器官病毒分布 | 第36页 |
3.4 感染PPMV-1 后,鸽组织中TLRs及RIG-I基因表达水平变化 | 第36-40页 |
3.5 感染PPMV-1 后,鸽组织中AvBDs基因表达水平变化 | 第40页 |
3.6 感染PPMV-1 后,鸽组织中细胞因子的表达水平变化 | 第40-47页 |
3.7 感染PPMV-1 后,鸽组织中信号转导分子及凋亡基因的表达水平变化 | 第47-54页 |
4 讨论 | 第54-59页 |
4.1 经PPMV-1 对鸽子的感染 | 第54页 |
4.2 经PPMV-1 感染后,鸽体内各组织器官的病毒分布 | 第54页 |
4.3 经PPMV-1 感染后,鸽TLRs的组织表达差异 | 第54-55页 |
4.4 经PPMV-1 感染后,鸽AvBDs的组织表达差异 | 第55-56页 |
4.5 经PPMV-1 感染后,鸽细胞因子及调控蛋白的组织表达差异 | 第56-57页 |
4.6 经PPMV-1 感染后,鸽凋亡基因的组织表达差异 | 第57-59页 |
5 结论 | 第59-60页 |
致谢 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-73页 |
攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第73页 |