| 摘要 | 第3-7页 |
| Abstract | 第7-11页 |
| 缩略词表 | 第12-16页 |
| 1 文献综述 | 第16-26页 |
| 1.1 骨的结构与功能 | 第16页 |
| 1.2 骨的生物力学特性和功能适应性 | 第16-17页 |
| 1.3 运动对骨组织的影响 | 第17-20页 |
| 1.3.1 运动对骨组织形态结构的影响 | 第17页 |
| 1.3.2 运动对骨代谢相关生化标志物的影响 | 第17-18页 |
| 1.3.3 运动对骨生物力学性能的影响 | 第18-19页 |
| 1.3.4 运动中应力在骨组织内的传导效应 | 第19-20页 |
| 1.4 骨损伤治疗的现状 | 第20页 |
| 1.5 LIPUS促进骨愈合的研究现状 | 第20-24页 |
| 1.5.1 LIPUS的概述 | 第20-21页 |
| 1.5.2 LIPUS促进骨折愈合的实验研究进展 | 第21-22页 |
| 1.5.3 LIPUS促进骨愈合的临床研究进展 | 第22-23页 |
| 1.5.4 LIPUS促进骨愈合的机制及优越性 | 第23-24页 |
| 1.6 选题依据 | 第24-25页 |
| 1.7 实验设计 | 第25-26页 |
| 2 实验材料与方法 | 第26-42页 |
| 2.1 实验试剂及仪器 | 第26-28页 |
| 2.1.1 实验所用的主要试剂 | 第26-27页 |
| 2.1.2 实验所用的主要仪器 | 第27-28页 |
| 2.2 实验动物及模型构建 | 第28-29页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第28-29页 |
| 2.2.2 骨损伤模型构建 | 第29页 |
| 2.3 实验动物分组与干预方式 | 第29-30页 |
| 2.4 动物处死与取材 | 第30-31页 |
| 2.4.1 动物处死与血液处理 | 第30页 |
| 2.4.2 动物取材及样品处理 | 第30-31页 |
| 2.5 动物实验测试方法 | 第31-35页 |
| 2.5.1 大鼠体重、抓力、骨重等指标的测试 | 第31页 |
| 2.5.2 大鼠血清指标的测试 | 第31-32页 |
| 2.5.3 大鼠股骨微结构的测定 | 第32-33页 |
| 2.5.4 大鼠股骨的生物力学参数测定 | 第33-34页 |
| 2.5.5 大鼠股骨的H&E(Hematoxylin-eosin)染色 | 第34-35页 |
| 2.6 实验细胞的培养及传代 | 第35页 |
| 2.7 实验细胞的分组及干预方式 | 第35-36页 |
| 2.8 细胞实验测试方法 | 第36-40页 |
| 2.8.1 细胞增殖情况的检测 | 第36页 |
| 2.8.2 Myostatin重组蛋白干预方案 | 第36-37页 |
| 2.8.3 细胞的RNA提取、反转录及实时定量荧光PCR检测 | 第37-38页 |
| 2.8.4 细胞的蛋白提取及Western Blot分析 | 第38-40页 |
| 2.8.5 细胞免疫荧光 | 第40页 |
| 2.9 统计学处理 | 第40-42页 |
| 3 实验结果 | 第42-60页 |
| 3.1 大鼠常规指标测定结果 | 第42-44页 |
| 3.1.1 运动与LIPUS对大鼠体重、抓力与骨重等指标的影响 | 第42-43页 |
| 3.1.2 运动与LIPUS对大鼠血清指标的影响 | 第43-44页 |
| 3.2 大鼠股骨micro-CT定量分析 | 第44-47页 |
| 3.2.1 运动与LIPUS对大鼠骨松质微结构的影响 | 第44-45页 |
| 3.2.2 运动与LIPUS对大鼠皮质骨的骨密度值的影响 | 第45-46页 |
| 3.2.3 大鼠股骨损伤处的三维重建 | 第46-47页 |
| 3.3 运动与LIPUS对大鼠股骨生物力学指标的影响 | 第47-49页 |
| 3.4 运动与LIPUS对大鼠股骨的H&E染色结果的影响 | 第49页 |
| 3.5 LIPUS干预对成骨细胞增殖水平的影响 | 第49-50页 |
| 3.6 Myostatin重组蛋白对成骨细胞增殖状况的影响 | 第50-51页 |
| 3.7 LIPUS干预后MC3T3-E1细胞Wnt信号通路中关键蛋白表达及活性的变化 | 第51-54页 |
| 3.7.1 LIPUS对MC3T3-E1细胞Wnt1蛋白和mRNA表达的影响 | 第51-52页 |
| 3.7.2 LIPUS对MC3T3-E1细胞GSK-3β蛋白和mRNA表达的影响 | 第52-53页 |
| 3.7.3 LIPUS对MC3T3-E1细胞的β-catenin蛋白和mRNA表达的影响 | 第53-54页 |
| 3.8 LIPUS干预后MC3T3-E1细胞MSTN信号通路中关键蛋白表达及活性的变化 | 第54-57页 |
| 3.8.1 LIPUS对MC3T3-E1细胞的AcvrⅡB蛋白和mRNA表达的影响 | 第54-55页 |
| 3.8.2 LIPUS对MC3T3-E1细胞的Smad2蛋白和mRNA表达的影响 | 第55-56页 |
| 3.8.3 LIPUS对MC3T3-E1细胞的Smad3蛋白和mRNA表达的影响 | 第56-57页 |
| 3.9 Myostatin重组蛋白对LIPUS诱导成骨细胞增殖的Wnt信号通路中关键分子的影响 | 第57-60页 |
| 4 分析与讨论 | 第60-68页 |
| 4.1 运动与LIPUS对大鼠体重、抓力等指标的影响分析 | 第60-61页 |
| 4.2 运动与LIPUS对骨代谢相关血清生化指标的影响 | 第61页 |
| 4.3 运动与LIPUS对大鼠股骨损伤修复的影响 | 第61-64页 |
| 4.3.1 骨损伤的检测与治疗 | 第61-62页 |
| 4.3.2 运动与LIPUS对大鼠股骨损伤后超微结构的影响分析 | 第62-63页 |
| 4.3.3 运动与LIPUS对大鼠股骨损伤后生物力学特性的影响分析 | 第63-64页 |
| 4.4 LIPUS对MC3T3-E1细胞增殖水平的影响 | 第64页 |
| 4.5 LIPUS与Myostatin重组蛋白干预后MC3T3-E1细胞的MSTN信号通路及Wnt信号通路中关键蛋白表达及活性的变化 | 第64-68页 |
| 5 结论 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-80页 |
| 致谢 | 第80-82页 |
| 攻读硕士学位期间科研成果 | 第82页 |
