| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第14-25页 |
| 1.1 绞股蓝概况 | 第14-15页 |
| 1.2 绞股蓝主要化学成分研究 | 第15-20页 |
| 1.2.1 皂苷类 | 第15-16页 |
| 1.2.2 多糖类 | 第16-17页 |
| 1.2.3 黄酮类 | 第17页 |
| 1.2.4 甾醇类 | 第17-19页 |
| 1.2.5 木脂素 | 第19页 |
| 1.2.6 氨基酸 | 第19页 |
| 1.2.7 维生素 | 第19页 |
| 1.2.8 微量元素 | 第19-20页 |
| 1.2.9 其它成分 | 第20页 |
| 1.3 绞股蓝的药理活性研究 | 第20-23页 |
| 1.3.1 抗氧化 | 第20页 |
| 1.3.2 抗动脉粥样硬化 | 第20-21页 |
| 1.3.3 抑菌 | 第21页 |
| 1.3.4 抗肿瘤 | 第21页 |
| 1.3.5 调控脂质代谢 | 第21页 |
| 1.3.6 神经保护 | 第21-22页 |
| 1.3.7 护肝 | 第22页 |
| 1.3.8 降血糖 | 第22页 |
| 1.3.9 免疫 | 第22-23页 |
| 1.3.10 抗炎 | 第23页 |
| 1.4 临床实验应用 | 第23页 |
| 1.5 本课题的研究背景及主要研究内容 | 第23-25页 |
| 1.5.1 本课题的研究背景 | 第23-24页 |
| 1.5.2 主要研究内容 | 第24-25页 |
| 第二章 绞股蓝乙醇提取物和四个不同极性部位的制备及其活性研究 | 第25-46页 |
| 2.1 绞股蓝乙醇粗提物及四个极性部位的制备 | 第25-27页 |
| 2.1.1 材料和仪器设备 | 第25-26页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第26-27页 |
| 2.2 抗癌细胞活性 | 第27-35页 |
| 2.2.1 材料和仪器设备 | 第28-29页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第29-31页 |
| 2.2.3 实验结果与讨论 | 第31-35页 |
| 2.3 自由基消除和抗氧化活性 | 第35-44页 |
| 2.3.1 材料和仪器设备 | 第36页 |
| 2.3.2 实验方法 | 第36-39页 |
| 2.3.3 实验结果与讨论 | 第39-44页 |
| 2.4 本章小结 | 第44-46页 |
| 第三章 绞股蓝活性部位分离纯化及其结构分析鉴定 | 第46-62页 |
| 3.1 材料和仪器设备 | 第46-47页 |
| 3.1.1 实验材料与试剂 | 第46-47页 |
| 3.1.2 实验仪器与设备 | 第47页 |
| 3.2 实验方法 | 第47-52页 |
| 3.2.1 高效液相色谱法 | 第47-48页 |
| 3.2.2 薄层色谱法 | 第48页 |
| 3.2.3 硅胶柱色谱法 | 第48-49页 |
| 3.2.4 Sephadex LH-20凝胶柱色谱法 | 第49页 |
| 3.2.5 聚酰胺柱色谱法 | 第49-50页 |
| 3.2.6 ODS柱色谱法 | 第50页 |
| 3.2.7 质谱的测定 | 第50页 |
| 3.2.8 核磁共振波谱（~1H-NMR、~(13)C-NMR）的测定 | 第50-51页 |
| 3.2.9 活性部位的分离纯化 | 第51-52页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第52-61页 |
| 3.3.1 化合物1的结构鉴定 | 第53-54页 |
| 3.3.2 化合物2的结构鉴定 | 第54-55页 |
| 3.3.3 化合物3的结构鉴定 | 第55-57页 |
| 3.3.4 化合物4的结构鉴定 | 第57-58页 |
| 3.3.5 化合物5的结构鉴定 | 第58-59页 |
| 3.3.6 化合物6的结构鉴定 | 第59页 |
| 3.3.7 化合物7的结构鉴定 | 第59-60页 |
| 3.3.8 化合物8的结构鉴定 | 第60-61页 |
| 3.4 本章小结 | 第61-62页 |
| 第四章 单体化合物的活性研究 | 第62-70页 |
| 4.1 样品细胞毒性测定 | 第62页 |
| 4.2 抗癌细胞活性 | 第62-66页 |
| 4.2.1 A-549细胞形态的变化 | 第62-63页 |
| 4.2.2 A-549细胞增殖抑制作用 | 第63-64页 |
| 4.2.3 MCF细胞形态的变化 | 第64-65页 |
| 4.2.4 MCF细胞增殖抑制作用 | 第65-66页 |
| 4.3 自由基消除和抗氧化活性 | 第66-68页 |
| 4.3.1 DPPH自由基清除活性测定 | 第66-67页 |
| 4.3.2 ABTS自由基清除活性测定 | 第67页 |
| 4.3.3 铁离子抗氧化力测定 | 第67-68页 |
| 4.4 本章小结 | 第68-70页 |
| 第五章 绞股蓝总皂苷的抗炎活性及作用机制研究 | 第70-91页 |
| 5.1 绞股蓝总皂苷的制备、含量测定及液相指纹图谱分析 | 第70-74页 |
| 5.1.1 材料和仪器设备 | 第70-71页 |
| 5.1.1.1 实验材料与试剂 | 第70-71页 |
| 5.1.1.2 实验仪器与设备 | 第71页 |
| 5.1.2 实验方法 | 第71-72页 |
| 5.1.2.1 D101大孔吸附树脂预处理 | 第71页 |
| 5.1.2.2 绞股蓝总皂苷的制备 | 第71页 |
| 5.1.2.3 GPMS含量的测定 | 第71-72页 |
| 5.1.2.4 GPMS液相指纹图谱分析 | 第72页 |
| 5.1.3 实验结果 | 第72-74页 |
| 5.2 GPMS抗炎活性 | 第74-79页 |
| 5.2.1 材料和仪器设备 | 第74-75页 |
| 5.2.1.1 实验材料与试剂 | 第74-75页 |
| 5.2.1.2 实验仪器与设备 | 第75页 |
| 5.2.2 实验方法 | 第75-77页 |
| 5.2.2.1 GPMS对RAW 264.7细胞代谢活力的影响 | 第75页 |
| 5.2.2.2 GPMS对LPS诱导的RAW 264.7细胞形态的影响 | 第75-76页 |
| 5.2.2.3 GPMS对LPS诱导的RAW 264.7细胞释放NO的影响 | 第76-77页 |
| 5.2.3 实验结果与讨论 | 第77-79页 |
| 5.2.3.1 GPMS对RAW 264.7细胞代谢活力的影响 | 第77页 |
| 5.2.3.2 GPMS对LPS诱导的RAW 264.7细胞形态的影响 | 第77-78页 |
| 5.2.3.3 GPMS对LPS诱导的RAW 264.7细胞释放NO的影响 | 第78-79页 |
| 5.3 GPMS抗炎活性机制研究 | 第79-90页 |
| 5.3.1 实验方法 | 第79-82页 |
| 5.3.1.1 GPMS对LPS诱导RAW 264.7细胞释放炎性因子的影响 | 第79页 |
| 5.3.1.2 GPMS对LPS诱导RAW 264.7细胞炎性因子mRNA的影响 | 第79-80页 |
| 5.3.1.3 GPMS对LPS诱导RAW 264.7细胞信号通路的影响 | 第80-82页 |
| 5.3.2 实验结果与讨论 | 第82-90页 |
| 5.3.2.1 GPMS对LPS诱导RAW 264.7细胞释放炎性因子的影响 | 第82-84页 |
| 5.3.2.2 GPMS对LPS诱导RAW 264.7细胞炎性因子mRNA的影响 | 第84-87页 |
| 5.3.2.3 GPMS对LPS诱导RAW 264.7细胞信号通路的影响 | 第87-90页 |
| 5.4 本章小结 | 第90-91页 |
| 结论和展望 | 第91-94页 |
| 一、结论 | 第91-92页 |
| 二、创新点 | 第92-93页 |
| 三、展望 | 第93-94页 |
| 参考文献 | 第94-103页 |
| 附录 化合物谱图 | 第103-112页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第112-113页 |
| 致谢 | 第113-114页 |
| 附件 | 第114页 |
