中文摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第一章 前言 | 第10-18页 |
1.1 低温对植物及农业的影响 | 第10页 |
1.2 光合同化产物运输与分配 | 第10-16页 |
1.2.1 光合同化产物的转运路径 | 第10-14页 |
1.2.2 光合同化产物的分配 | 第14-16页 |
1.3 低温与光合同化产物分配的关系 | 第16页 |
1.3.1 低温对光合同化产物生产的影响 | 第16页 |
1.3.2 低温对光合同化产物分配的影响 | 第16页 |
1.4 研究的内容和意义 | 第16-18页 |
1.4.1 研究内容 | 第16-17页 |
1.4.2 研究意义 | 第17-18页 |
第二章 实验材料与方法 | 第18-26页 |
2.1 水培实验 | 第18-19页 |
2.1.1 水培方法 | 第18-19页 |
2.1.2 水培体系 | 第19页 |
2.2 培养的条件 | 第19页 |
2.3 生物性状统计方法和指标 | 第19-20页 |
2.4 光合系统Ⅱ荧光参数测定和光合速率的测定 | 第20页 |
2.5 CbSUT4与AtSUT4基因cDNA克隆 | 第20页 |
2.6 转基因植株鉴定 | 第20-23页 |
2.6.1 实验材料 | 第20-21页 |
2.6.2 试剂与引物 | 第21页 |
2.6.3 实验方法 | 第21-23页 |
2.7 CbSUT4与AtSUT4基因低温胁迫表达量检测 | 第23页 |
2.7.1 实验材料 | 第23页 |
2.7.2 实验方法 | 第23页 |
2.8 CbSUT4与AtSUT4亚细胞定位 | 第23页 |
2.8.1 实验材料及器材 | 第23页 |
2.8.2 方法和步骤 | 第23页 |
2.9 碳水化合物的测定 | 第23-25页 |
2.9.1 可溶性总糖的测定 | 第23页 |
2.9.2 蔗糖的测定 | 第23-24页 |
2.9.3 果糖的测定 | 第24页 |
2.9.4 淀粉的测定 | 第24-25页 |
2.10 电导率的测定 | 第25-26页 |
2.10.1 主要器材及试剂 | 第25页 |
2.10.2 实验方法及步骤 | 第25-26页 |
第三章 实验结果 | 第26-43页 |
3.1 水培方法的改进 | 第26页 |
3.2 低温胁迫对不同时期拟南芥生物量分配和生长的影响 | 第26-30页 |
3.2.1 低温 16/16℃下对不同时期拟南芥地上和地下生物量的影响 | 第26-28页 |
3.2.2 低温 22/12℃下对拟南芥生物量分配和生长的影响 | 第28-30页 |
3.3 低温胁迫下碳水化合物的变化 | 第30-34页 |
3.3.1 低温 16/16℃碳水化合物的变化 | 第30-33页 |
3.3.2 低温 22/12℃碳水化合物的变化 | 第33-34页 |
3.4 低温胁迫对叶绿素荧光参数和光合参数的影响 | 第34-35页 |
3.5 低温胁迫对拟南芥叶和根抗冻性的影响 | 第35-38页 |
3.6 低温对CbSUT4和AtSUT4转基因植株的影响 | 第38-43页 |
3.6.1 转基因植株的鉴定 | 第38页 |
3.6.2 CbSUT4与AtSUT4亚细胞定位 | 第38-39页 |
3.6.3 RT-PCR检测转基因植株对低温的响应 | 第39-40页 |
3.6.4 转基因植株在低温下的表型 | 第40-41页 |
3.6.5 低温下转基因植株可溶性糖含量变化 | 第41-42页 |
3.6.6 低温下转基因植株电导率的测定 | 第42-43页 |
第四章 结果与讨论 | 第43-47页 |
4.1 水培实验 | 第43页 |
4.2 生物量的分配统计 | 第43-44页 |
4.3 低温影响生物量的分配 | 第44-45页 |
4.4 低温引起碳水化合物分配和抗冻性改变 | 第45-46页 |
4.5 超表达CbSUT4和AtSUT4基因引起拟南芥糖含量和冷耐受性变化 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-54页 |
致谢 | 第54页 |