中文摘要 | 第3-5页 |
ABSTRACT | 第5-7页 |
缩略词表 | 第11-13页 |
第一章 引言 | 第13-15页 |
第二章 文献综述 跑台运动通过MICRORNA-483 及IGF2的作用机制改善学习记忆功能 | 第15-19页 |
2.1 运动与认知关系和IGF的研究进展及机制研究 | 第15-17页 |
2.1.1 IGF家族 | 第15-16页 |
2.1.2 IGF与认知功能的关系 | 第16页 |
2.1.3 IGF2及其受体信号通路 | 第16-17页 |
2.1.4 运动与IGF2的关系 | 第17页 |
2.2 MICRORNA | 第17-19页 |
2.2.1 运动与microRNA的关系 | 第17-18页 |
2.2.2 micro RNA-483 与IGF2的关系 | 第18-19页 |
第三章 建立跑台模型及训练后检测对学习记忆的影响 | 第19-28页 |
3.1 实验材料 | 第19-23页 |
3.1.1 重要仪器简介 | 第19-21页 |
3.1.2 实验对象及分组 | 第21页 |
3.1.3 模型的制备 | 第21-22页 |
3.1.4 Morris水迷宫 | 第22-23页 |
3.1.5 取材 | 第23页 |
3.1.6 统计学分析 | 第23页 |
3.2 结果 | 第23-26页 |
3.2.1 Morris水迷宫检测6周跑台训练后大鼠认知功能结果 | 第23-26页 |
3.2.1.1 定位航行试验检测大鼠学习记忆能力(逃避潜伏期) | 第23-24页 |
3.2.1.2 空间探索试验检测大鼠记忆能力 | 第24-26页 |
3.3 讨论 | 第26-27页 |
3.4 小结 | 第27-28页 |
第四章 跑台运动后大鼠海马差异基因表达谱分析 | 第28-46页 |
4.1 材料与方法 | 第28-36页 |
4.1.1 实验所需设备、试剂及其配制 | 第28-33页 |
4.1.1.1 实验试剂 | 第28页 |
4.1.1.2 实验试剂配制 | 第28-33页 |
4.1.2 重要仪器 | 第33-34页 |
4.1.3 差异基因表达谱 | 第34页 |
4.1.4 QPCR验证 | 第34-35页 |
4.1.5 WB技术分析 | 第35-36页 |
4.1.6 免疫荧光染色 | 第36页 |
4.2 结果 | 第36-42页 |
4.2.1 6周跑台后大鼠海马中的基因芯片结果分析 | 第36-42页 |
4.2.1.1 周跑台后大鼠海马中的差异表达基因 | 第36-38页 |
4.2.1.2 生物学过程 (biological process,BP)分析 | 第38-40页 |
4.2.1.3 文献查阅IGF2和Thr7的研究进展,确定研究对象。 | 第40页 |
4.2.1.4 软件预测最终的目基因及microRNA | 第40-42页 |
4.3 IGF2 在 6 周跑台训练后海马 IGF2 及 micro RNA-483 基因的表达变化 | 第42页 |
4.4.海马IGF2蛋白水平表达 | 第42-43页 |
4.5 基因定位 | 第43页 |
4.6 讨论 | 第43-45页 |
4.7 小结 | 第45-46页 |
第五章 MIR-483 与IFG2对体外培养的海马神经元存活的影响 | 第46-57页 |
5.1 方法与材料 | 第46-53页 |
5.1.1 实验所需设备、试剂及其配制 | 第46-50页 |
5.1.1.1 实验试剂 | 第46-49页 |
5.1.1.2 实验设备 | 第49-50页 |
5.1.2 海马神经元培养 | 第50-51页 |
5.1.3 PC12筛选IGF2的有效片段 | 第51-52页 |
5.1.4 实时定量PCR | 第52页 |
5.1.5 micro RNA483与si-IFG2转染原代神经元 | 第52页 |
5.1.6 统计学分析 | 第52-53页 |
5.2 结果 | 第53-55页 |
5.2.1 原代神经元培养,有效片段筛选及IGF2转染 | 第53-54页 |
5.2.2 micro RNA-483 转染 | 第54页 |
5.2.3 micro RNA-483 对体外培养海马神经元的影响 | 第54-55页 |
5.3 讨论 | 第55-56页 |
5.4 小结 | 第56-57页 |
结论 | 第57-58页 |
参考文献 | 第58-64页 |
攻读硕士学位期间发表的论文 | 第64-65页 |
致谢 | 第65页 |