摘要 | 第6-8页 |
ABSTRACT | 第8-9页 |
英文缩略语 | 第13-15页 |
第一章 绪论 | 第15-20页 |
1.1 概况 | 第15页 |
1.2 钙激活钾通道与血管重建 | 第15-17页 |
1.3 TRP通道与血管平滑肌重建 | 第17-18页 |
1.4 TRP通道与钙敏感钾电流之间的关系 | 第18-19页 |
1.5 本文研究的主要内容和思路 | 第19-20页 |
第二章 TRPC激动剂ANG Ⅱ对高血压大鼠血管平滑肌张力的影响 | 第20-32页 |
2.1 引言 | 第20-22页 |
2.2 实验仪器及材料 | 第22-23页 |
2.2.1 实验仪器 | 第22页 |
2.2.2 主要实验药品及试剂 | 第22页 |
2.2.3 主要溶液的成分及配制方法 | 第22-23页 |
2.3 实验方法 | 第23-26页 |
2.3.1 大鼠肾动脉缩窄性高血压模型(两肾一夹)的制备方法 | 第23页 |
2.3.2 大鼠血压的测定 | 第23-24页 |
2.3.3 胸主动脉的取材 | 第24-25页 |
2.3.4 离体血管平滑肌收缩实验 | 第25页 |
2.3.5 统计学方法 | 第25-26页 |
2.4 实验结果 | 第26-31页 |
2.4.1 AngⅡ对高血压大鼠离体血管平滑肌的作用 | 第26-27页 |
2.4.2 非特异性TRPC通道阻断剂的作用 | 第27-29页 |
2.4.3 胞外与胞内钙在AngⅡ诱导的血管张力增加中的贡献 | 第29-31页 |
2.5 本章小结 | 第31-32页 |
第三章 高血压大鼠血管平滑肌TRPC及AT1表达变化 | 第32-49页 |
3.1 引言 | 第32-34页 |
3.2 实验器材及材料 | 第34-36页 |
3.2.1 实验仪器 | 第34页 |
3.2.2 主要实验药品及试剂 | 第34-35页 |
3.2.3 主要溶液及配制 | 第35-36页 |
3.3 实验方法 | 第36-38页 |
3.3.1 血管平滑肌组织蛋白的提取 | 第36页 |
3.3.2 蛋白浓度的测定 | 第36页 |
3.3.3 SDS-PAGE凝胶电泳 | 第36页 |
3.3.4 转膜 | 第36-37页 |
3.3.5 免疫反应以及显色 | 第37-38页 |
3.4 实验结果 | 第38-48页 |
3.4.1 AT1的表达 | 第38-40页 |
3.4.2 高血压大鼠血管平滑肌TRPC的表达 | 第40-48页 |
3.4.2.1 高血压大鼠血管平滑肌TRPC1的表达 | 第40-42页 |
3.4.2.2 高血压大鼠血管平滑肌TRPC3的表达 | 第42-44页 |
3.4.2.3 高血压大鼠血管平滑肌TRPC4的表达 | 第44-46页 |
3.4.2.4 高血压大鼠血管平滑肌TRPC6的表达 | 第46-48页 |
3.5 本章小结 | 第48-49页 |
第四章 讨论 | 第49-51页 |
全文小结 | 第51-52页 |
参考文献 | 第52-57页 |
综述 | 第57-67页 |
5.1 引言 | 第57-58页 |
5.2 TRPA | 第58-59页 |
5.3 TRPC | 第59页 |
5.4 TRPM | 第59-60页 |
5.5 TRPML | 第60页 |
5.6 TRPP | 第60页 |
5.7 TRPV | 第60-62页 |
参考文献 | 第62-67页 |
致谢 | 第67页 |