| 摘要 | 第4-8页 |
| ABSTRACT | 第8-11页 |
| 第一章 绪论 | 第22-28页 |
| 1.1 药物和个人护理用品概况 | 第22-23页 |
| 1.1.1 药物和个人护理用品的来源 | 第22页 |
| 1.1.2 药物和个人护理用品的种类 | 第22-23页 |
| 1.1.2.1 抗生素 | 第22-23页 |
| 1.1.2.2 合成香精香料类 | 第23页 |
| 1.1.2.3 非甾体类扰炎药 | 第23页 |
| 1.1.2.4 防腐剂 | 第23页 |
| 1.1.3 药物和个人护理用品的,毒性及对环境的影响 | 第23页 |
| 1.2 水体中样品前处理技术简介 | 第23-25页 |
| 1.2.1 液液笨取法 | 第23-24页 |
| 1.2.2 固相萃取 | 第24页 |
| 1.2.3 固相微萃取 | 第24页 |
| 1.2.4 液相微萃取 | 第24页 |
| 1.2.5 中空纤维液相微萃取 | 第24-25页 |
| 1.3 药物和个人护理用品的检测方法 | 第25-26页 |
| 1.3.1 气相色谱-串联质谱法 | 第25页 |
| 1.3.2 高效液相色谱串联质谱法 | 第25-26页 |
| 1.3.3 高效毛细管电泳法 | 第26页 |
| 1.4 水中药物和个人护理用品的降解方法 | 第26页 |
| 1.5 本课题研究的意义和目的 | 第26-28页 |
| 第二章 中空纤维液相微萃取法萃取饮品中的水杨酸,萘普生,双氯芬酸和布洛芬 | 第28-45页 |
| 2.1 非甾体抗炎药物(NSAIDs)简介 | 第28页 |
| 2.2 实验部分 | 第28-32页 |
| 2.2.1 试剂及材料 | 第28-29页 |
| 2.2.2 仪器及设备 | 第29-30页 |
| 2.2.3 标准储备液及流动相的配制 | 第30页 |
| 2.2.4 质谱条件 | 第30-31页 |
| 2.2.5 色谱条件 | 第31-32页 |
| 2.2.6 样品前处理 | 第32页 |
| 2.2.7 实际水样的检测 | 第32页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第32-44页 |
| 2.3.1 仪器条件优化 | 第33-35页 |
| 2.3.1.1 质谱条件的优化 | 第33-34页 |
| 2.3.1.2 液相条件优化 | 第34-35页 |
| 2.3.2 样品前处理方法优化 | 第35-40页 |
| 2.3.2.1 有机萃取溶剂的考察 | 第35-36页 |
| 2.3.2.2 给出相pH的优化 | 第36-37页 |
| 2.3.2.3 搅拌速率的优化 | 第37-38页 |
| 2.3.2.4 萃取时间的优化 | 第38页 |
| 2.3.2.5 萃取温度的优化 | 第38-39页 |
| 2.3.2.6 离子强度的影响 | 第39-40页 |
| 2.3.3 方法学验 | 第40-44页 |
| 2.3.3.1 特异性 | 第40页 |
| 2.3.3.2 检出限,定量限,富集倍数,标准曲线及线性范围 | 第40-42页 |
| 2.3.3.3 基质效应,方法的精密度及回收率实验 | 第42-44页 |
| 2.3.4 实际样品分析 | 第44页 |
| 2.4 本章小结 | 第44-45页 |
| 第三章 采用P25-TiO_2/TEOS薄板催化降解水中四种NSAIDs并使用UPLC-MS检测 | 第45-53页 |
| 3.1 光催化降解水中NSAIDs概况 | 第45页 |
| 3.2 实验部分 | 第45-47页 |
| 3.2.1 实验材料及试剂 | 第45-46页 |
| 3.2.2 制备P25-TiO_2/TEOS粉末和陶瓷片薄膜 | 第46页 |
| 3.2.3 光催化实验 | 第46页 |
| 3.2.4 分析检测 | 第46-47页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第47-51页 |
| 3.3.1 P25-TiO_2/TEOS粉末和薄膜的表征 | 第47页 |
| 3.3.2 优化光降解反应的实验条件 | 第47-51页 |
| 3.3.2.1 四种药物在P25-TiO_2/TEOS薄膜上暗反应吸附的影响 | 第47页 |
| 3.3.2.2 搅拌的影响 | 第47-48页 |
| 3.3.2.3 初始pH值的影响 | 第48-49页 |
| 3.3.2.4 P25-TiO_2/TEOS用量的影响 | 第49页 |
| 3.3.2.5 降解时间对降解动力学影响 | 第49-50页 |
| 3.3.2.6 P25-TiO_2/TEOS薄膜和P25薄膜催化能力的比较 | 第50页 |
| 3.3.2.7 萘普生光降解产物的分析鉴定 | 第50-51页 |
| 3.4 本章小结 | 第51-53页 |
| 第四章 碳纳米管负载的中空纤维萃取环境水样中的舒林酸,依托度酸,吲哚美辛和萘丁美酮 | 第53-70页 |
| 4.1 HF-LPME技术的改进与创新 | 第53页 |
| 4.2 实验部分 | 第53-57页 |
| 4.2.1 试剂与仪器 | 第53-54页 |
| 4.2.1.1 主要材料及药物 | 第53-54页 |
| 4.2.1.2 实验仪器和没备 | 第54页 |
| 4.2.2 标准储备液及流动相的配制 | 第54页 |
| 4.2.2.1 非甾体类药物标准储备液的配制 | 第54页 |
| 4.2.2.2 流动相的配制 | 第54页 |
| 4.2.3 仪器条件 | 第54-56页 |
| 4.2.3.1 质谱条件 | 第54-55页 |
| 4.2.3.2 色谱条件 | 第55-56页 |
| 4.2.4 CNTs/Silica-HF的制备 | 第56-57页 |
| 4.2.4.1 CNTs-COOH的制备 | 第56页 |
| 4.2.4.2 CNTs/Silica-HF的制备 | 第56-57页 |
| 4.2.5 样品前处理 | 第57页 |
| 4.2.6 实际水样的检测 | 第57页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第57-69页 |
| 4.3.1 仪器条件优化 | 第57-63页 |
| 4.3.1.1 质谱条件的优化 | 第57-59页 |
| 4.3.1.2 液相条件优化 | 第59-60页 |
| 4.3.1.3 标准曲线与线性范围 | 第60-61页 |
| 4.3.1.4 灵敏度 | 第61-63页 |
| 4.3.2 碳纳米管负载的中空纤维相关表征 | 第63-64页 |
| 4.3.2.1 MWCNTs-COOH的表征 | 第63页 |
| 4.3.2.2 CNTs/Silica-HF的表征 | 第63-64页 |
| 4.3.3 样品前处理方法优化 | 第64-68页 |
| 4.3.3.1 萃取试剂的考察 | 第64-65页 |
| 4.3.3.2 给出相pH的优化 | 第65页 |
| 4.3.3.3 萃取时间的优化 | 第65-66页 |
| 4.3.3.4 搅拌速率的优化 | 第66-67页 |
| 4.3.3.5 萃取温度的优化 | 第67页 |
| 4.3.3.6 盐效应 | 第67-68页 |
| 4.3.4 富集倍数 | 第68页 |
| 4.3.5 方法的精密度及回收率实验 | 第68-69页 |
| 4.3.6 实际样品分析 | 第69页 |
| 4.4 本章小结 | 第69-70页 |
| 第五章 超高效液相色谱-质谱联用法检测饮料中镇静剂γ-羟基丁酸及其前体药物 | 第70-76页 |
| 5.1 镇静剂γ-羟基丁酸及其前体药物简介 | 第70页 |
| 5.2 实验部分 | 第70-71页 |
| 5.2.1 仪器与试剂 | 第70页 |
| 5.2.2 标准溶液的配制 | 第70页 |
| 5.2.3 色谱-质谱条件 | 第70-71页 |
| 5.2.4 实际样品前处理 | 第71页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第71-75页 |
| 5.3.1 质谱条件的优化 | 第71页 |
| 5.3.2 色谱条件的优化 | 第71-72页 |
| 5.3.2.1 色谱柱的选择 | 第71-72页 |
| 5.3.2.2 流动相的选择 | 第72页 |
| 5.3.3 标准曲线与线性范围、检出限与定量下限 | 第72-73页 |
| 5.3.4 基质效应 | 第73-74页 |
| 5.3.5 加标回收实验 | 第74页 |
| 5.3.6 精密度 | 第74页 |
| 5.3.7 实际样品的检测 | 第74-75页 |
| 5.4 本章小结 | 第75-76页 |
| 第六章 结论与展望 | 第76-79页 |
| 6.1 结论 | 第76-77页 |
| 6.2 论文的创新点 | 第77-78页 |
| 6.3 展望 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
| 研究成果以及发表的学术论文 | 第85-86页 |
| 作者和导师简介 | 第86-87页 |
| 附件 | 第87-88页 |
