| 致谢 | 第7-12页 |
| 摘要 | 第12-14页 |
| Abstract | 第14-16页 |
| 缩写词(Abbreviation) | 第17-19页 |
| 前言 | 第19-21页 |
| 1 文献综述：十字花科植物根肿病的致病性和遗传多样性研究进展 | 第21-37页 |
| 1.1 十字花科植物根肿病及抗病育种研究进展 | 第21-27页 |
| 1.1.1 根肿病的发生与危害 | 第21页 |
| 1.1.2 根肿病的症状识别 | 第21-22页 |
| 1.1.3 芸薹根肿菌的生物学特性 | 第22-23页 |
| 1.1.4 根肿病的寄主及病原菌的侵染方式 | 第23-24页 |
| 1.1.5 芸薹根肿菌的检测 | 第24-25页 |
| 1.1.5.1 植株诱导法 | 第24页 |
| 1.1.5.2 荧光显微镜观察法 | 第24页 |
| 1.1.5.3 血清学分析法 | 第24-25页 |
| 1.1.5.4 PCR技术 | 第25页 |
| 1.1.6 根肿菌的接种方法 | 第25-26页 |
| 1.1.7 根肿病抗病育种研究 | 第26-27页 |
| 1.2 十字花科植物根肿芸薹菌的致病性与遗传多样性研究 | 第27-33页 |
| 1.2.1 芸薹根肿菌与寄主互作 | 第27-29页 |
| 1.2.1.1 植物病原菌发生变异的遗传学研究 | 第27-28页 |
| 1.2.1.2 植物群体抗病性多样性的遗传学研究 | 第28页 |
| 1.2.1.3 病原菌群体致病性多样性的遗传学研究 | 第28页 |
| 1.2.1.4 植物和病原菌互作的遗传学研究 | 第28-29页 |
| 1.2.2 芸薹根肿病菌致病性分化 | 第29-32页 |
| 1.2.3 根肿病发病机理研究 | 第32-33页 |
| 1.3 十字花科植物根肿病综合防治措施 | 第33-36页 |
| 1.3.1 农业防治 | 第33页 |
| 1.3.2 药剂防治 | 第33-34页 |
| 1.3.3 生物防治 | 第34-36页 |
| 1.4 前景与展望 | 第36-37页 |
| 2 优化接种方法的研究 | 第37-45页 |
| 2.1 材料与方法 | 第37-40页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第37页 |
| 2.1.2 病原菌来源 | 第37页 |
| 2.1.3 接种液的制备 | 第37-38页 |
| 2.1.4 接种试验优化的研究 | 第38-40页 |
| 2.1.4.1 试验条件及管理 | 第38页 |
| 2.1.4.2 不同接种方法对发病程度的影响 | 第38页 |
| 2.1.4.3 不同保存形式的菌源对发病程度的影响 | 第38-39页 |
| 2.1.4.4 应用血球计数板进行孢子计数 | 第39页 |
| 2.1.4.5 室内接种条件的优化处理 | 第39页 |
| 2.1.4.6 调查及评价标准 | 第39-40页 |
| 2.2 结果与分析 | 第40-43页 |
| 2.2.1 不同接种方法对发病程度的影响 | 第40页 |
| 2.2.2 不同保存形式的菌源对发病程度的影响 | 第40-41页 |
| 2.2.3 室内接种条件的优化处理 | 第41-43页 |
| 2.3 讨论 | 第43-45页 |
| 3 芸薹属作物根肿病抗性品种的筛选 | 第45-57页 |
| 3.1 材料与方法 | 第45-46页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第45页 |
| 3.1.2 病原菌来源 | 第45页 |
| 3.1.3 材料抗/感根肿病鉴定 | 第45页 |
| 3.1.4 数据统计分析 | 第45-46页 |
| 3.2 结果与分析 | 第46-55页 |
| 3.2.1 根肿病抗/感鉴定试验 | 第46-50页 |
| 3.2.2 不同材料对根肿病抗性差异及显著性分析 | 第50-55页 |
| 3.3 讨论 | 第55-57页 |
| 4 芸薹根肿菌生理小种的检测 | 第57-67页 |
| 4.1 材料与方法 | 第58页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第58页 |
| 4.1.2 菌种来源 | 第58页 |
| 4.1.3 ECD鉴别寄主抗/感根肿病鉴定 | 第58页 |
| 4.1.4 数据统计分析 | 第58页 |
| 4.2 结果与分析 | 第58-65页 |
| 4.2.1 上海青浦区大盈镇根肿菌生理小种鉴定 | 第58-59页 |
| 4.2.2 湖北长阳火烧坪根肿菌生理小种鉴定 | 第59-60页 |
| 4.2.3 浙江省台州市温岭根肿菌生理小种的鉴定 | 第60页 |
| 4.2.4 湖北恩施利川根肿菌生理小种的鉴定 | 第60-61页 |
| 4.2.5 湖北恩施双河镇根肿菌生理小种的鉴定 | 第61-62页 |
| 4.2.6 浙江省温州市藤桥镇根肿菌生理小种的鉴定 | 第62-63页 |
| 4.2.7 西藏林芝地区根肿菌生理小种的鉴定 | 第63页 |
| 4.2.8 根肿菌的致病性分化 | 第63-65页 |
| 4.3 讨论 | 第65-67页 |
| 4.3.1 ECD16/0/0与为害台湾地区的芸薹根肿菌为同一生理小种 | 第65页 |
| 4.3.2 芸薹种根肿菌存在明显的致病性分化 | 第65页 |
| 4.3.3 芸薹种的芜菁亚种类作物可作为抗根肿病病育种的抗源材料 | 第65-66页 |
| 4.3.4 各地应因地制宜,选择栽培不同的蔬菜以减轻根肿病的为害 | 第66-67页 |
| 5 芸薹根肿菌的快速鉴别 | 第67-85页 |
| 5.1 材料与方法 | 第67-71页 |
| 5.1.1 芸薹根肿菌生理小种来源 | 第67-68页 |
| 5.1.2 PCR引物及其来源 | 第68页 |
| 5.1.3 病根组织总DNA提取 | 第68-69页 |
| 5.1.4 PCR反应体系及扩增程序 | 第69-71页 |
| 5.1.5.1 差异片段的回收 | 第70页 |
| 5.1.5.2 回收产物的载体连接 | 第70页 |
| 5.1.5.3 大肠杆菌DH5α感受态细胞的制备和转化 | 第70-71页 |
| 5.1.5.4 挑菌斑 | 第71页 |
| 5.1.5.5 摇菌 | 第71页 |
| 5.1.5.6 菌液PCR | 第71页 |
| 5.1.5.7 测序 | 第71页 |
| 5.2 结果与分析 | 第71-83页 |
| 5.2.1 根肿菌的镜检观察 | 第71-72页 |
| 5.2.2 测序结果分析 | 第72页 |
| 5.2.3 各生理小种的序列分析 | 第72-81页 |
| 5.2.4 各生理小种的系统进化树分析 | 第81-83页 |
| 5.3 讨论 | 第83-85页 |
| 5.3.1 P.brassicae不同生理小种的rDNA序列具有多态性 | 第83页 |
| 5.3.2 P brassicae rDNA的28S区域保守程度较高 | 第83页 |
| 5.3.3 1RF和2RF两对引物可用于芸薹根肿菌的早期检测 | 第83-85页 |
| 结论 | 第85-87页 |
| 参考文献 | 第87-97页 |
| 附件 | 第97-113页 |
| 作者简历 | 第113-114页 |
