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编码肽酶新基因try1A的改造以及突变酶的功能鉴定研究

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-7页
第一章 前言第11-23页
    1.1 肽酶的概述第11-12页
    1.2 丝氨酸蛋白酶家族第12-13页
        1.2.1 丝氨酸蛋白酶的空间结构及催化中心三联体结构第12-13页
        1.2.2 丝氨酸蛋白酶的催化机制第13页
    1.3 丝氨酸蛋白酶家族重要成员及的应用第13-15页
        1.3.1 胰蛋白酶第13-14页
        1.3.2 枯草杆菌蛋白酶第14页
        1.3.3 丝氨酸羧肽酶第14-15页
        1.3.4 胰凝乳蛋白酶第15页
    1.4 肽酶的研究现状第15页
    1.5 易错PCR技术的概述第15-17页
        1.5.1 易错PCR技术的概念第16页
        1.5.2 易错PCR技术的原理第16-17页
        1.5.3 易错PCR技术的发展第17页
    1.6 易错PCR技术的应用第17-21页
        1.6.1 提高酶的催活力第17-18页
        1.6.2 提高酶热稳定性第18页
        1.6.3 提高酶的低温适应性第18-19页
        1.6.4 改变酶的pH特性第19页
        1.6.5 改变酶在溶剂中的溶解性第19-20页
        1.6.6 提高菌株对有机溶剂的耐受性第20-21页
        1.6.7 在探究生理机制方面的应用第21页
    1.7 课题的目的与意义第21页
    1.8 研究技术路线第21-23页
第二章 材料与方法第23-42页
    2.1 实验材料第23-28页
        2.1.1 基因来源第23页
        2.1.2 菌株与质粒第23-24页
        2.1.3 常用药品及酶制剂第24-25页
        2.1.4 溶液与培养基第25-28页
        2.1.5 抗生素第28页
    2.2 菌株的活化与培养第28页
    2.3 质粒的提取第28页
    2.4 DNA纯化及回收第28页
    2.5 感受态细胞的制备第28-29页
    2.6 DNA的转化第29-30页
    2.7 易错PCR条件的优化第30-31页
        2.7.1 Mg~(2+)浓度的确定第30页
        2.7.2 Mn~(2+)浓度的确定第30-31页
        2.7.3 Mg~(2+)和Mn~(2+)的最佳组合第31页
        2.7.4 PCR条件的评价第31页
    2.8 易错PCR突变体库的构建与筛选第31-34页
        2.8.1 易错PCR反应模板的制备第31-32页
        2.8.2 利用易错PCR技术对try1A基因进行扩增第32-33页
        2.8.3 酶切连接第33页
        2.8.4 阳性克隆的筛选第33-34页
        2.8.5 阳性克隆的验证第34页
    2.9 trylA突变基因在大肠杆菌的表达及纯化第34-37页
        2.9.1 突变基因表达载体的构建与转化第34-35页
        2.9.2 目的蛋白的诱导表达第35页
        2.9.3 目的蛋白的纯化第35-37页
    2.10 酶学性质的测定第37-42页
        2.10.1 蛋白酶酶活测定的方法第37-41页
        2.10.2 最适反应温度第41页
        2.10.3 最适反应pH第41页
        2.10.4 温度对酶活力的影响第41页
        2.10.5 金属离子对酶活力的影响第41页
        2.10.6 有机试剂对酶活力的影响第41-42页
第三章 易错PCR条件的优化第42-46页
    3.1 Mg~(2+)浓度的确定第42-43页
    3.2 Mn~(2+)浓度的确定第43页
    3.3 Mg~(2+)和Mn~(2+)最佳组合浓度的确定第43-45页
    3.4 本章小结第45-46页
第四章 突变体库的构建第46-52页
    4.1 重组质粒的构建第46-47页
        4.1.1 质粒的提取第46-47页
        4.1.2 try1A基因易错PCR扩增第47页
        4.1.3 重组质粒的构建第47页
    4.2 突变体的构建第47-50页
        4.2.1 重组质粒的验证第47-49页
        4.2.2 筛选条件的确定第49-50页
    4.3 阳性克隆的筛选与复筛第50-51页
    4.4 本章小结第51-52页
第五章 try1A突变基因在大肠杆菌中的表达第52-58页
    5.1 try1A突变基因的表达系统的构建第52-53页
        5.1.1 try1A突变基因的扩增第52-53页
        5.1.2 try1A突变基因重组表达质粒的构建第53页
    5.2 try1A突变基因在大肠杆菌中的表达纯化第53-57页
    5.3 本章小结第57-58页
第六章 Try1A突变酶酶学性质的研究第58-69页
    6.1 引言第58页
    6.2 突变酶酶学性质的鉴定第58-65页
        6.2.1 最适温度的测定第58-60页
        6.2.2 最适pH的测定第60-61页
        6.2.3 不同温度对蛋白耐受性影响第61-63页
        6.2.4 金属离子对酶活力的影响第63-64页
        6.2.5 化学制剂对酶活力的影响第64-65页
    6.3 酶动力学参数的测定第65-68页
    6.4 本章小结第68-69页
第七章 讨论和展望第69-76页
    7.1 讨论第69-74页
        7.1.1 易错PCR条件的优化第69-70页
        7.1.2 突变体库的筛选第70-71页
        7.1.3 蛋白的表达纯化第71-72页
        7.1.4 突变酶与原始酶酶学性质分析第72-74页
    7.2 展望第74-76页
参考文献第76-83页
附录第83-85页
致谢第85-86页
攻读研究生学位期间的科研成果第86页

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