| 摘要 | 第8-9页 |
| 英文摘要 | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第11-20页 |
| 1.1 植物抗寒性的研究 | 第11-18页 |
| 1.1.1 生物膜系统与植物的抗寒性 | 第11-13页 |
| 1.1.2 细胞水分含量与植物的抗寒性 | 第13-14页 |
| 1.1.3 渗透调节物质与植物的抗寒性 | 第14-15页 |
| 1.1.4 低温胁迫相关蛋白 | 第15-18页 |
| 1.2 冬小麦抗寒性鉴定方法 | 第18页 |
| 1.3 研究的目的与意义 | 第18-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-26页 |
| 2.1 试验材料 | 第20-22页 |
| 2.1.1 抗寒性鉴定的试验材料与试验设计 | 第20页 |
| 2.1.2 冷相关蛋白基因表达测定的试验材料与试验设计 | 第20-21页 |
| 2.1.3 试验药品 | 第21页 |
| 2.1.4 试验仪器 | 第21-22页 |
| 2.2 试验方法及测定 | 第22-24页 |
| 2.2.1 田间返青率调查 | 第22页 |
| 2.2.2 相对电导率的测定 | 第22页 |
| 2.2.3 分蘖节水分含量的测定 | 第22页 |
| 2.2.4 分蘖节总RNA的提取与检测 | 第22-23页 |
| 2.2.5 c DNA的合成 | 第23页 |
| 2.2.6 实时荧光定量PCR | 第23-24页 |
| 2.3 数据处理 | 第24-26页 |
| 2.3.1 综合评价方法 | 第24-25页 |
| 2.3.2 q RT-PCR数据处理 | 第25页 |
| 2.3.3 其他数据的处理 | 第25-26页 |
| 3 结果与分析 | 第26-42页 |
| 3.1 冬小麦的返青情况 | 第26页 |
| 3.2 冬小麦分蘖节的电导率变化 | 第26-27页 |
| 3.3 冬小麦分蘖节的水分变化 | 第27-30页 |
| 3.3.1 组织含水量的变化 | 第27-28页 |
| 3.3.2 自由水和束缚水的变化 | 第28-30页 |
| 3.3.3 相对含水量的变化 | 第30页 |
| 3.4 各指标的相关性分析 | 第30-31页 |
| 3.5 隶属函数法对各冬小麦品种抗寒性综合评价 | 第31页 |
| 3.6 QRT-PCR定量结果 | 第31-42页 |
| 3.6.1 不同低温下TSN1基因的荧光定量PCR | 第32-33页 |
| 3.6.2 不同低温下WCOR518基因的荧光定量PCR | 第33-34页 |
| 3.6.3 不同低温下DBP基因的荧光定量PCR | 第34-35页 |
| 3.6.4 不同低温下DHN5基因的荧光定量PCR | 第35-36页 |
| 3.6.5 不同低温下COR39基因的荧光定量PCR | 第36-37页 |
| 3.6.6 不同低温下NBL1基因的荧光定量PCR | 第37-38页 |
| 3.6.7 不同低温下NBS-LRR1基因的荧光定量PCR | 第38-40页 |
| 3.6.8 不同低温下CS120基因的荧光定量PCR | 第40-42页 |
| 4 讨论 | 第42-47页 |
| 4.1 低温下冬小麦返青率、电导率和水分含量之间的关系 | 第42-43页 |
| 4.2 不同冬小麦品种的抗寒性鉴定 | 第43页 |
| 4.3 冷相关蛋白基因与抗寒性的关系 | 第43-47页 |
| 4.3.1 小麦抗病蛋白TSN1 | 第43-44页 |
| 4.3.2 冷驯化蛋白WCOR518 | 第44页 |
| 4.3.3 脱水响应蛋白DBP和脱水蛋白DHN 5 | 第44-45页 |
| 4.3.4 低温诱导蛋白COR39 | 第45页 |
| 4.3.5 NBS-LRR抗性蛋白 | 第45-46页 |
| 4.3.6 冷激蛋白CS120 | 第46-47页 |
| 5 结论 | 第47-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-57页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第57页 |
