| 英文缩略词对照表 | 第7-9页 |
| 中文摘要 | 第9-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 1.前言 | 第15-18页 |
| 2.实验材料 | 第18-21页 |
| 2.1 实验动物 | 第18-19页 |
| 2.2 实验药物 | 第19页 |
| 2.3 实验试剂 | 第19-20页 |
| 2.4 主要实验仪器与设备 | 第20-21页 |
| 3.实验方法 | 第21-27页 |
| 3.1 大鼠切口痛模型的建立 | 第21页 |
| 3.2 动物分组 | 第21-22页 |
| 3.3 给药时间和方法 | 第22页 |
| 3.4 PMWT测定 | 第22页 |
| 3.5 实验标本的提取 | 第22-23页 |
| 3.6 ELISA法检测大鼠血清炎性因子TNF-α, IL-1β, IL-6 和IL-10 及血清和组织内β-内啡肽水平 | 第23-24页 |
| 3.7 免疫组织化学染色及图像分析法检测大鼠脊髓腰膨大和ARC中β-内啡肽的表达 | 第24-25页 |
| 3.7.1 制片 | 第24页 |
| 3.7.2 免疫组织化学染色法操作步骤： | 第24-25页 |
| 3.8 RT-qPCR法检测大鼠脊髓和ARC内β-内啡肽前体POMC mRNA的变化 | 第25-27页 |
| 3.8.1 RNA的提取 | 第25-26页 |
| 3.8.2 逆转录（reverse transcription， RT）反应 | 第26页 |
| 3.8.3 荧光定量PCR反应 | 第26-27页 |
| 3.9 统计分析 | 第27页 |
| 4.实验结果 | 第27-38页 |
| 4.1 大鼠切口痛模型的建立 | 第27-28页 |
| 4.2 大鼠PMWT的变化 | 第28页 |
| 4.3 大鼠血清炎症因子水平的变化 | 第28-31页 |
| 4.4 ELISA法测得血清、脊髓和ARC中β-内啡肽水平变化 | 第31-33页 |
| 4.5 脊髓中β-内啡肽水平免疫组织化学染色结果 | 第33-35页 |
| 4.6 ARC中β-内啡肽水平免疫组织化学染色结果 | 第35-37页 |
| 4.7 脊髓与ARC中POMC mRNA相对表达量RT-qPCR结果 | 第37-38页 |
| 5.讨论 | 第38-43页 |
| 5.1 COX抑制剂可抑制切口痛大鼠的痛行为，抑制痛觉过敏，减轻机体的促炎免疫反应，增强抗炎免疫反应 | 第38-39页 |
| 5.2 COX抑制剂对大鼠外周（血液）及中枢（脊髓和ARC）β-内啡肽水平的升高作用，提示COX抑制剂的镇痛作用及对痛觉过敏的抑制作用可能与此有关 | 第39-41页 |
| 5.3 β-内啡肽前体——POMC mRNA在痛觉过敏时的相对表达水平因应激刺激而升高；而在使用不同剂量COX抑制剂时，POMC mRNA的相对表达水平则随着用药剂量增加而升高 | 第41-42页 |
| 5.4 展望 | 第42-43页 |
| 6.结论 | 第43-44页 |
| 7.不足之处及下一步工作 | 第44-45页 |
| 8.参考文献 | 第45-53页 |
| 附录 | 第53-55页 |
| 致谢 | 第55-57页 |
| 综述 | 第57-74页 |
| 参考文献 | 第64-74页 |
