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REGγ-20S蛋白酶体组装机制探究

摘要第6-7页
Abstract第7页
第一章 文献综述第10-15页
    1. 20S核心颗粒第10-11页
    2. 蛋白酶体激活因子第11-12页
        2.1 ATP非依赖的激活因子第11页
        2.2 ATP依赖的激活因子第11-12页
    3. 蛋白酶体激活因子-20S蛋白酶体复合物第12-14页
        3.1 PA26-20S复合物第12-13页
        3.2 Blm10-20S复合物第13页
        3.3 19S-20S复合物第13-14页
    4. REGγ研究进展第14页
    5. 本研究的目的和意义第14-15页
第二章 材料与方法第15-32页
    1. 材料第15-19页
        1.1 菌株和细胞第15页
        1.2 质粒和抗体第15-16页
        1.3 蛋白纯化所用试剂和层析柱第16页
        1.4 其它主要试剂第16-17页
        1.5 蛋白纯化相关溶液配制第17-19页
    2. 方法第19-32页
        2.1 克隆构建第19-24页
        2.2 酵母菌株AH109复苏及pGAD-PSMA1-PSMA7/pGBK-REG γ的转化第24-25页
        2.3 免疫共沉淀检测REGγ与PSMA1-PSMA7之间的相互作用第25-26页
        2.4 免疫印迹实验第26-27页
        2.5 无标签PEGγ蛋白纯化第27-30页
        2.6 GST-REGγ纯化流程第30-31页
        2.7 TNT体外翻译系统第31页
        2.8 体外降解体系第31-32页
第三章 实验结果与分析第32-54页
    1. 蛋白酶体激活因子REGγ特异性结合20S蛋白酶体α7亚基第32-36页
    2. REGγC末端的第245位的脯氨酸和第254位的酪氨酸对REGγ-20S的结合是不可或缺的第36-44页
    3. 推测REGγC末端结合至α7第66位精氨酸上第44-45页
    4. 推测REG γ活性环结合至α7 N端的第8位酪氨酸和第9位天冬氨酸第45-50页
    5. REGγ20S结合模型预测第50-51页
    6. 无标签REG γ蛋白纯化以及低温冷冻电镜图像采集第51-54页
第四章 全文总结第54-56页
    1. 本文主要研究成果第54页
    2. 本文主要创新之处第54-55页
    3. 本论文需要进一步研究的工作第55-56页
参考文献第56-61页
附录Ⅰ(溶液配方)第61-63页
附录Ⅱ第63-64页
致谢第64页

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