摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
引言 | 第11-18页 |
1 鳗弧菌 | 第12-13页 |
1.1 生物学特性 | 第12页 |
1.2 鳗弧菌病的症状及其病理变化 | 第12页 |
1.3 当前防治手段 | 第12-13页 |
2 鳗弧菌生物膜概述 | 第13-15页 |
3 鳗弧菌病的发病条件与生物膜的形成 | 第15-16页 |
3.1 水体中鳗弧菌的存在与感染 | 第15页 |
3.2 创伤为鳗弧菌的初始黏附创造条件 | 第15-16页 |
4 干预生物膜感染的关键途径 | 第16-17页 |
4.1 抑制生物膜的形成 | 第16页 |
4.2 破坏已形成的生物膜 | 第16-17页 |
5 本研究的目的与意义 | 第17-18页 |
第一章 激光共聚焦显微镜观察鳗弧菌生物膜的形成 | 第18-24页 |
1 材料与方法 | 第18-20页 |
1.1 实验材料 | 第18-19页 |
1.1.1 菌株 | 第18页 |
1.1.2 主要试剂 | 第18-19页 |
1.1.3 主要仪器与耗材 | 第19页 |
1.2 实验方法 | 第19-20页 |
1.2.1 菌悬液的配制 | 第19页 |
1.2.2 生物膜的定量分析 | 第19页 |
1.2.3 生物膜体外构建 | 第19-20页 |
1.2.4 生物膜的观察 | 第20页 |
2 结果 | 第20-22页 |
2.1 鳗弧菌生物膜形成过程 | 第20-21页 |
2.2 激光共聚焦显微镜(CLSM)观察鳗弧菌生物膜的形成 | 第21-22页 |
3 讨论 | 第22-24页 |
第二章 环境因子对致病性鳗弧菌生物膜形成的影响 | 第24-35页 |
1 材料与方法 | 第25-27页 |
1.1 材料 | 第25页 |
1.1.1 菌株 | 第25页 |
1.1.2 主要试剂 | 第25页 |
1.1.3 主要仪器与耗材 | 第25页 |
1.2 方法 | 第25-27页 |
1.2.1 菌悬液的配制 | 第25-26页 |
1.2.2 鳗弧菌生物膜行成量的测定 | 第26页 |
1.2.3 环境因子对鳗弧菌生物膜的影响 | 第26-27页 |
1.2.3.1 培养时间对鳗弧菌生物膜形成的影响 | 第26页 |
1.2.3.2 初始菌浓度对鳗弧菌生物膜形成的影响 | 第26页 |
1.2.3.3 培养温度对鳗弧菌生物膜形成的影响 | 第26页 |
1.2.3.4 pH值对鳗弧菌生物膜形成的影响 | 第26页 |
1.2.3.5 Ca~(2+)、Mg~(2+)、NaCl对鳗弧菌生物膜形成的影响 | 第26-27页 |
1.2.3.6 黏液和组织提取液包被对鳗弧菌生物膜形成的影响 | 第27页 |
1.3 数据处理 | 第27页 |
2 结果与分析 | 第27-32页 |
2.1 培养时间对鳗弧菌生物膜形成的影响 | 第27-28页 |
2.2 初始菌浓度对鳗弧菌生物膜形成的影响 | 第28-29页 |
2.3 温度对鳗弧菌生物膜形成的影响 | 第29页 |
2.4 pH值对鳗弧菌生物膜形成的影响 | 第29-30页 |
2.5 Ca~(2+)、Mg~(2+)、NaCl对鳗弧菌生物膜形成的影响 | 第30-32页 |
2.6 不同黏液和组织提取液包被对鳗弧菌生物膜形成的影响 | 第32页 |
3 讨论 | 第32-34页 |
4 结论 | 第34-35页 |
第三章 大黄、穿心莲与五倍子对鳗弧菌及其生物膜的干预 | 第35-43页 |
1 材料与方法 | 第36-38页 |
1.1 实验材料 | 第36页 |
1.1.1 菌株 | 第36页 |
1.1.2 主要试剂 | 第36页 |
1.1.3 主要仪器与耗材 | 第36页 |
1.2 方法 | 第36-37页 |
1.2.1 菌悬液的配制 | 第36页 |
1.2.2 药材的提取和供试药液的制备 | 第36页 |
1.2.3 最小抑菌浓度(MIC)和最小杀菌浓度(MBC)的测定 | 第36-37页 |
1.2.4 鳗弧菌生物膜的形成的测定 | 第37页 |
1.2.5 穿心莲和五倍子抗鳗弧菌生物膜黏附作用的测定 | 第37页 |
1.2.6 穿心莲和五倍子对鳗弧菌生物膜最小抑膜浓度(SMIC)的测定 | 第37页 |
1.3 数据处理 | 第37-38页 |
2 结果 | 第38-41页 |
2.1 MIC和MBC测定结果 | 第38页 |
2.2 穿心莲和五倍子对鳗弧菌生物膜黏附作用的影响 | 第38-40页 |
2.3 穿心莲和五倍子对鳗弧菌生物膜最小抑膜浓度(SMIC)的测定 | 第40-41页 |
3 讨论 | 第41-43页 |
小结 | 第43-44页 |
参考文献 | 第44-50页 |
附录 | 第50-51页 |
致谢 | 第51页 |