摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第一章 绪论 | 第11-36页 |
1.1 引言 | 第11页 |
1.2 金属氧化物磁性纳米材料 | 第11-18页 |
1.2.1 金属氧化物磁性纳米材料的制备 | 第11-15页 |
1.2.1.1 共沉淀法 | 第11-12页 |
1.2.1.2 热分解法 | 第12-14页 |
1.2.1.3 微乳液法 | 第14页 |
1.2.1.4 水热法和溶剂热法 | 第14-15页 |
1.2.2 多元金属氧化物磁性纳米复合材料的应用 | 第15-18页 |
1.2.2.1 磁共振成像中的应用 | 第15-16页 |
1.2.2.2 多模式成像中的应用 | 第16页 |
1.2.2.3 药载中的应用 | 第16-17页 |
1.2.2.4 生物催化中的应用 | 第17-18页 |
1.3 磁性介孔纳米复合材料 | 第18-25页 |
1.3.1 磁性介孔硅纳米复合材料 | 第18-21页 |
1.3.1.1 装有磁性纳米粒子的介孔硅纳米球 | 第18-19页 |
1.3.1.2 磁性核和介孔硅壳的超顺磁性微球 | 第19-20页 |
1.3.1.3 填充磁性纳米粒子于介孔通道的有序介孔硅 | 第20页 |
1.3.1.4 其他形态的磁性介孔硅纳米复合物 | 第20-21页 |
1.3.2 磁性介孔碳纳米复合材料 | 第21-22页 |
1.3.3 磁性介孔纳米复合材料的应用 | 第22-24页 |
1.3.3.1 在生物医学和生物技术领域的应用 | 第22-23页 |
1.3.3.2 在污水处理中的应用 | 第23页 |
1.3.3.3 在催化领域的应用 | 第23-24页 |
1.3.4 总结与展望 | 第24-25页 |
1.4 本论文选题意义 | 第25-27页 |
参考文献 | 第27-36页 |
第二章 MnFe_2O_4纳米粒子的可控合成及其基于钆的配合物的纳米复合物作为可调控和可增强的T_1和T_2的磁共振成像造影剂 | 第36-55页 |
2.1 引言 | 第36-37页 |
2.2 MnFe_2O_4纳米粒子的制备,功能化及其表征 | 第37-42页 |
2.2.1 实验部分 | 第37-40页 |
2.2.1.1 化学试剂 | 第37-38页 |
2.2.1.2 实验仪器 | 第38页 |
2.2.1.3 实验步骤图 | 第38页 |
2.2.1.4 16 nm MnFe_2O_4纳米粒子的制备 | 第38页 |
2.2.1.5 18 nm和27 nm MnFe_2O_4纳米粒子的合成 | 第38-39页 |
2.2.1.6 叶酸乙二胺的合成 | 第39页 |
2.2.1.7 Folate-DTPA-NH-PEG-DIB(1a)的合成 | 第39页 |
2.2.1.8 Gd:Folate-DTPA-NH-PEG-DIB(1b)的合成 | 第39-40页 |
2.2.1.9 Gd:Folate-DTPA-NH-PEG-DIB-MnFe_2O_4(1c)的合成 | 第40页 |
2.2.2 结果与讨论 | 第40-42页 |
2.3 功能化MnFe_2O_4纳米复合物1c对癌细胞的靶向双模式T_1和T_2磁共振成像 | 第42-50页 |
2.3.1 实验部分 | 第42页 |
2.3.1.1 化学试剂及细胞 | 第42页 |
2.3.1.2 实验仪器 | 第42页 |
2.3.2 1c的磁共振成像 | 第42-43页 |
2.3.2.1 1c的T_1和T_2磁共振成像 | 第42页 |
2.3.2.2 1c的癌细胞的靶向双模式T_1和T_2磁共振成像 | 第42-43页 |
2.3.3 细胞毒性的测定 | 第43页 |
2.3.4 组织病理学和免疫组织化学的评估 | 第43页 |
2.3.5 结果与讨论 | 第43-50页 |
2.3.5.1 水溶性修饰的磁性纳米粒子稳定性评价及其磁性测量 | 第43-48页 |
2.3.5.2 癌细胞的靶向双模式T_1和T_2磁共振成像 | 第48-49页 |
2.3.5.3 细胞毒性实验和体内毒性 | 第49-50页 |
2.4 结论 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-55页 |
第三章 新型3D介孔Fe_3O_4@Cu_2O-rGO框架的配位组装及其作为高效率的和可重复利用的催化剂用于喹喔啉及其衍生物的合成 | 第55-89页 |
3.1 引言 | 第55-57页 |
3.2 Fe_3O_4@Cu_2O-rGO纳米复合物的制备 | 第57-67页 |
3.2.1 实验部分 | 第57-60页 |
3.2.1.1 化学试剂 | 第57页 |
3.2.1.2 实验仪器 | 第57页 |
3.2.1.3 实验设计路线图 | 第57-58页 |
3.2.1.4 核壳型Fe_3O_4@Cu_2O纳米晶的制备 | 第58页 |
3.2.1.5 6nm的CuFe_2O_4纳米粒子的制备 | 第58-59页 |
3.2.1.6 氧化石墨烯(GO)的制备 | 第59页 |
3.2.1.7 rGO的制备 | 第59页 |
3.2.1.8 rGO-S-DIB的制备 | 第59页 |
3.2.1.9 Fe_3O_4@Cu_2O-rGO的制备 | 第59-60页 |
3.2.2 结果与讨论 | 第60-67页 |
3.2.2.1 Fe_3O_4@Cu_2O-rGO纳米复合物的表征 | 第60-65页 |
3.2.2.2 核壳型Fe_3O_4@Cu_2O纳米晶的形成机理 | 第65-67页 |
3.3 Fe_3O_4@Cu_2O-rGO纳米复合物用于催化合成喹喔啉及其衍生物 | 第67-73页 |
3.3.1 实验部分 | 第67-68页 |
3.3.1.1 化学试剂及实验仪器 | 第67-68页 |
3.3.1.2 实验步骤 | 第68页 |
3.3.2 结果与讨论 | 第68-73页 |
3.4 结论 | 第73-74页 |
参考文献 | 第74-78页 |
附加信息 | 第78-89页 |
第四章 功能化修饰MnFe_2O_4纳米颗粒的尺寸和形貌依赖的类过氧化物酶的催化活性测定及其在比色检测癌症细胞中的应用 | 第89-109页 |
4.1 引言 | 第89-90页 |
4.2 实验部分 | 第90-96页 |
4.2.1 化学试剂 | 第90页 |
4.2.2 实验仪器 | 第90-91页 |
4.2.3 实验步骤图 | 第91-92页 |
4.2.4 MnFe_2O_4纳米粒子的制备 | 第92-93页 |
4.2.4.1 16nm,18nm和27nm的MnFe_2O_4纳米粒子的制备 | 第92页 |
4.2.4.2 4nm MnFe_2O_4纳米粒子的制备 | 第92-93页 |
4.2.5 MnFe_2O_4纳米粒子的表面功能化 | 第93-94页 |
4.2.5.1 DIB-PEH-NH-FA(1a)的制备 | 第93页 |
4.2.5.2 DIB-PEH-NH-FITC(1b)的制备 | 第93页 |
4.2.5.3 MnFe_2O_4-DIB-PEG-NH_2(1c)的制备 | 第93-94页 |
4.2.5.4 MnFe_2O_4-DIB-PEG-NH_2-FA(1d)的制备 | 第94页 |
4.2.5.5 MnFe_2O_4-DIB-PEG-NH-FA,FITC(1e)的制备 | 第94页 |
4.2.6 1c作为过氧化氢酶催化TMB显色的实验条件的优化选择 | 第94-95页 |
4.2.6.1 最适的吸收波长的选择 | 第94页 |
4.2.6.2 最适缓冲溶液的选择 | 第94-95页 |
4.2.6.3 最适反应温度的选择 | 第95页 |
4.2.7 MnFe_2O_4-DIB-PEG-NH_2(1c)过氧化氢酶催化机理探索 | 第95页 |
4.2.8 MnFe_2O_4-DIB-PEG-NH_2-FA(1d)细胞内过氧化氢酶催化活性的测定 | 第95-96页 |
4.2.9 MnFe_2O_4-DIB-PEG-NH_2-FA(1d)细胞毒性的测定 | 第96页 |
4.2.10 MnFe_2O_4-DIB-PEG-NH_2-FA,FITC(1e)的细胞成像 | 第96页 |
4.3 结果与讨论 | 第96-105页 |
4.3.1 MnFe_2O_4的表征 | 第96-98页 |
4.3.2 3,3',5,5'-四甲基联苯胺发光原理讨论 | 第98-99页 |
4.3.3 MnFe_2O_4-DIB-PEG-NH_2(1c)的过氧化氢酶活性的测定 | 第99-103页 |
4.3.4 MnFe_2O_4-DIB-PEG-NH_2(1c)的过氧化氢酶催化机理 | 第103-104页 |
4.3.5 MnFe_2O_4-DIB-PEG-NH_2-FA(1d)的细胞内类过氧化氢酶活性检测 | 第104页 |
4.3.6 MnFe_2O_4-DIB-PEG-NH-FA,FITC(1e)的细胞成像 | 第104-105页 |
4.4 结论 | 第105-107页 |
参考文献 | 第107-109页 |
第五章 结论 | 第109-110页 |
5.1 主要结论 | 第109页 |
5.2 研究展望 | 第109-110页 |
在学期间的研究成果及参与课题 | 第110-111页 |
致谢 | 第111页 |